干貨 | 關(guān)于TaqMan探針法qPCR,你想知道的都在這
概述
實時熒光定量PCR(Real?-time Fluorescence Quantitative Polymerase Chain Reaction,qPCR)是指在PCR反應(yīng)體系中加入化學(xué)熒光物質(zhì),利用熒光信號積累實時監(jiān)測PCR擴增產(chǎn)物并進行定量分析的方法。根據(jù)所用化學(xué)熒光物質(zhì)的不同,qPCR可分為熒光染料法(SYBR Green Ⅰ)和熒光探針法(TaqMan)。SYBR Green Ⅰ染料可以和任何dsDNA結(jié)合,缺乏特異性,qPCR反應(yīng)中若有非特異性擴增產(chǎn)物,會增加熒光值,影響定量結(jié)果的準確性,而探針法的出現(xiàn)很好地解決了染料法非特異性的問題。
TaqMan實時熒光定量PCR基本原理
TaqMan實時熒光定量PCR依據(jù)熒光共振能量轉(zhuǎn)移(fluorescence resonance energy transfer,F(xiàn)RET)原理,即在PCR擴增中加入一個特異性的熒光探針,該探針兩端分別標(biāo)記一個報告基團和一個淬滅基團;當(dāng)探針完整地結(jié)合在DNA單鏈上,報告基團發(fā)射的熒光信號被淬滅基團吸收,檢測不到熒光信號。qPCR擴增時,TaqDNA聚合酶的5’-3’核酸外切酶活性將探針?biāo)饷盖?,使得報告基團和淬滅基團分離,從而發(fā)出熒光。切割的熒光分子數(shù)與PCR產(chǎn)物的數(shù)量成正比,因此,通過檢測PCR反應(yīng)體系中的熒光強度可以達到監(jiān)測PCR產(chǎn)物擴增量的目的。該方法具有特異性強、靈敏度高等特點,在目前國內(nèi)的臨床診斷中應(yīng)用最為廣泛。

TaqMan實時熒光定量PCR的特點
1.特異性強
在探針法qPCR中,除加入引物外還增加一條特異性探針,當(dāng)引物和探針都與靶基因結(jié)合時,擴增時探針才會被水解酶切發(fā)出熒光;當(dāng)引物發(fā)生非特異性擴增時,探針不會結(jié)合到非特異性片段上,因此不會被水解酶切而發(fā)出熒光,從而提高了特異性。
2.準確度和靈敏度高
對于低拷貝或者低濃度樣品,相比于染料法,探針法避免了引物二聚體的熒光信號干擾,提升了檢測的準確度,并且探針法可檢測低至單拷貝樣品,靈敏度高。
3.可用于多重qPCR檢測
依據(jù)探針修飾的熒光基團不同,可用于多重實時熒光PCR,即在一個反應(yīng)管中用多個熒光基團來區(qū)分不同靶基因。該方法的優(yōu)勢在于:①同時檢測多個靶基因,提高檢測效率;②如果將多重qPCR擴增的靶基因之一設(shè)為內(nèi)質(zhì)控,則可為實時熒光PCR檢測提供假陰性的內(nèi)部質(zhì)控,以判斷檢測有陰性結(jié)果的有效性。
探針設(shè)計原則
實時熒光定量PCR實驗體系的設(shè)計對于整個檢測的成功非常重要,其中探針的設(shè)計是實驗的關(guān)鍵,應(yīng)根據(jù)其特性進行設(shè)計以適應(yīng)相應(yīng)要求。
1、TaqMan探針位置盡可能靠近擴增引物,但不能與引物重疊。
2、TaqMan探針長度一般為25~32 bp之間,最好不要超過40 bp。
3、TaqMan探針的Tm值應(yīng)比引物的高5~10℃,確保引物延伸時探針完全結(jié)合在模板上;引物Tm值通常在60℃左右,探針Tm值通常在65~70℃。
4、TaqMan探針5’端第一個堿基不能是G,因為探針?biāo)饷盖泻驡堿基也能夠淬滅熒光基團所發(fā)出的熒光信號。
5、避免探針內(nèi)部形成發(fā)夾結(jié)構(gòu)以及探針間三個堿基以上互補,同時避免與引物有三個堿基以上互補。
6、TaqMan探針中C最好比G多,相反則選擇其互補鏈;同時避免單一核苷酸成串,尤其是GGGG。
7、目前常用的引物和探針設(shè)計有Primer Express、Primer 3、Beacon Designer 2.0和NCBI。
常見修飾基團類型
對于Taqman探針熒光修飾基團的選擇,首先要保證熒光報告基團的最大激發(fā)波長(Excitation wavelength,Ex)和最大發(fā)射波長(Emission wavelength,Em)與qPCR儀器相匹配;其次淬滅基團的吸收光譜與報告基團的發(fā)射光譜有重合。以下是常用的修飾基團類型。


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