最美情侣中文字幕电影,在线麻豆精品传媒,在线网站高清黄,久久黄色视频

歡迎光臨散文網(wǎng) 會員登陸 & 注冊

心血管系統(tǒng) | 組織(細胞)特異性基因調(diào)控

2023-07-04 14:40 作者:小恒學術  | 我要投稿

血管系統(tǒng)是人體內(nèi)的一大循環(huán)系統(tǒng),按廣義可分為心臟和全身的血管系統(tǒng),按部位又可分為心血管(心臟周圍的供血系統(tǒng))、腦血管(腦部供血系統(tǒng))和外周血管(軀干、四肢和內(nèi)臟的血管),它們共同維持著機體內(nèi)環(huán)境的穩(wěn)態(tài)、新陳代謝和各組織器官的正常生理機能。

動脈和靜脈的管壁主要是由血管內(nèi)皮細胞和血管平滑肌細胞等組成(圖1左)[1],毛細血管則主要是單層的內(nèi)皮細胞和基膜組成,血管壁細胞在調(diào)節(jié)血管穩(wěn)態(tài)中起著非常重要的作用。另外,血腦屏障是中樞神經(jīng)系統(tǒng)的微血管系統(tǒng),由內(nèi)皮細胞和周細胞組成(圖1右)[2],是血液與大腦進行物質(zhì)交換、保護神經(jīng)組織免受毒素和病原體侵害至關重要的屏障。更重要的是,內(nèi)皮功能障礙或中膜血管平滑肌受損都會導致一系列心血管疾病的發(fā)生,例如動脈粥樣硬化、主動脈瘤、腦卒中、高血壓等等。目前大部分心血管疾病都沒有很好的治療策略,主要以預防和外科手術介入為主,因此研究人員都在積極尋找有效的藥物治療靶點。與此同時,基因治療的興起和迅速發(fā)展為心血管疾病的治療拓寬了道路。在往期《AAV在心血管疾病研究中的靶向策略》中通過心臟疾病的研究,已經(jīng)為大家介紹了腺相關病毒在靶向心臟中的應用,接下來我們再來看下其在體內(nèi)靶向感染血管的策略吧。



圖1 血管解剖結(jié)構[1, 2]。上:動、靜脈主要結(jié)構;下:中樞神經(jīng)系統(tǒng)微血管結(jié)構(EC:內(nèi)皮細胞;PC:周細胞;BM:基底膜;AE:星形膠質(zhì)細胞末端)

腺相關病毒載體(adeno-associated virus,AAV)具有安全性好、宿主范圍廣、免疫源性低、以及長期轉(zhuǎn)基因表達能力等優(yōu)點,已成為一種有吸引力的基因治療工具。AAV可以通過攜帶不同的血清型和組織/細胞特異性啟動子去感染相應的組織或細胞,那么目前有哪些血清型和啟動子可以靶向心血管呢?除此之外,對于腦血管和外周血管的感染可不可以做到呢?下面將為您一一介紹。

一、血清型選擇

AAV血清型是由Cap基因編碼的衣殼蛋白決定的,通過識別細胞表面受體來靶向不同的組織器官,從而達到感染特定組織的目的。目前已有研究報道,AAV1、AAV5和AAV9血清型均可感染主動脈(圖2,3)[3,4]。


圖2 AAV1、AAV2、AAV5感染大鼠主動脈效率比較[3]

圖3 AAV9感染小鼠頸動脈[4]

事實上,AAV1、5、9在體內(nèi)感染的組織具有一定的廣泛性。漢恒生物可提供更具靶向性的AAV血清型:AAV-Vec、AAV-eVEC、AAV-BR1和AAV-BI30(表1)。

表1 特異性感染內(nèi)皮細胞的AAV血清型

(1)AAV-Vec高效感染血管內(nèi)皮細胞[5]

Vec血清型是在AAV2血清型的基礎上改造而來的,它可以與內(nèi)皮細胞表面的肝素/HSPG結(jié)合,盡管與AAV2的結(jié)合能力相似,但AAV-Vec的細胞內(nèi)化率更高。據(jù)文獻報道,作者將AAV2、AAV-Nec(先前報道過靶向內(nèi)皮細胞的血清型)、AAV-Vec分別感染人臍靜脈內(nèi)皮細胞(HUVECs),在不同GOI(載體基因組與細胞的比)下,AAV-Vec的感染效率都是最高且具有統(tǒng)計學意義的(圖4)[5]。因此,提示AAV-Vec更適合用于體內(nèi)外轉(zhuǎn)導血管內(nèi)皮細胞。



圖4 與AAV2相比,AAV-Nec、AAV-Vec轉(zhuǎn)導HUVECs的效率

(2)AAV-BR1高效感染腦微血管內(nèi)皮細胞

BR1血清型也是通過在AAV2血清型中插入相應多肽篩選出來的,具有非常好的腦血管內(nèi)皮特異性。據(jù)文獻報道[6],作者將野生型AAV2、AAV-PPS(先前報道過的腦靶向血清型)、AAV-BR1通過尾靜脈注射感染小鼠,2周后經(jīng)活體成像顯示,與AAV2和AAV-PPS相比,AAV-BR1僅在大腦中聚集(圖5 左);隨后來自小腦、嗅球、紋狀體和大腦皮層的免疫熒光結(jié)果顯示,AAV-BR1所攜帶的eGFP與內(nèi)皮細胞標志物CD31在這些部位中共定位(圖5 右),表明AAV-BR1能高效感染腦血管內(nèi)皮細胞。




圖5 上:AAV-BR1經(jīng)尾靜脈注射靶向感染大腦;

? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?下:AAV-BRA1感染腦內(nèi)皮細胞

(3)AAV-BI30高效感染腦血管內(nèi)皮細胞

AAV-BR1更傾向于感染腦微血管內(nèi)皮細胞,即毛細血管內(nèi)皮細胞,對于動脈和靜脈內(nèi)皮的感染效率相對不足。為了解決這一問題,科研人員在AAV9血清型的基礎上進行改造,并命名為AAV-BI30血清型。經(jīng)實驗驗證,AAV-BI30能夠有效感染腦部動脈、靜脈和毛細血管的內(nèi)皮,而AAV-BR1主要局限于毛細血管內(nèi)皮(圖6)[7]。因此,相比于AAV-BR1,AAV-BI30感染腦血管內(nèi)皮細胞的效率更高、用途更廣;除大腦外,對整個中樞神經(jīng)系統(tǒng)和視網(wǎng)膜血管的內(nèi)皮細胞也有很好的嗜性[7]。

圖6 AAV-BI30有效轉(zhuǎn)導大腦動、靜脈內(nèi)皮細胞

二、?組織(細胞)特異性啟動子

表2 漢恒生物提供靶向血管細胞的特異性啟動子

(1)TIE1內(nèi)皮細胞特異性啟動子

?????? TIE1是一種受體酪氨酸激酶,在血管內(nèi)皮細胞中特異性表達,因此TIE1啟動子可以作為靶向血管內(nèi)皮細胞的特異性啟動子。有文獻報道,將AAV-CMV-eGFP和AAV-TIE-eGFP通過頸動脈結(jié)扎法注射到家兔動脈腔中,3周后的冰凍切片結(jié)果顯示,TIE啟動子使eGFP在頸動脈內(nèi)皮細胞中高表達(圖7)[8],證實了TIE啟動子的血管內(nèi)皮細胞特異性。



圖7 AAV-TIE-eGFP高效感染血管內(nèi)皮細胞

如圖8所示[9],是漢恒生物客戶發(fā)表在《Antioxidants》雜志上題為“Hydroxysafflor Yellow A Blocks HIF-1α Induction of NOX2 and Protects ZO-1 Protein in Cerebral Microvascular Endothelium”的文章,作者將漢恒生物提供的AAV2/BR1-TIE-miR30-m-Tjp1經(jīng)小鼠尾靜脈注射,成功感染腦微血管內(nèi)皮細胞,并實現(xiàn)對目的基因ZO-1的敲低。



圖8 AAV2/BR1-TIE-miR30-m-Tjp1感染小鼠腦微血管內(nèi)皮細胞

并敲低ZO-1

(2)SM22α平滑肌細胞特異性啟動子

?????? SM22α是一種22 kDa的鈣調(diào)相關蛋白,在平滑肌中特異性表達,且為平滑肌細胞最為廣泛的標志物。因此,AAV攜帶SM22α啟動子可用于靶向感染平滑肌細胞。然而,平滑肌不僅分布在血管,在消化道、呼吸道和生殖系統(tǒng)等也有廣泛的分布,所以SM22α啟動子通常需要配合相應的AAV血清型來靶向血管平滑肌細胞。如圖9所示[10],是漢恒生物客戶發(fā)表在《Cell Death & Differentiation》雜志題為“Ferroptotic stress facilitates smooth muscle cell dedifferentiation in arterial remodelling by disrupting mitochondrial homeostasis”的文章,作者通過漢恒生物構建了AAV2/9-SM22α-mGPX4-Flag-ZsGreen和AAV2/9-SM22α-ZsGreen,將病毒經(jīng)小鼠頸總動脈原位注射至血管腔中,2周后再進行尾靜脈注射,成功在小鼠頸動脈血管平滑肌細胞中過表達GPX4。



圖9 AAV2/9-SM22α-mGPX4-Flag-ZsGreen感染

小鼠頸動脈血管平滑肌細胞并過表達GPX4

三、注射方式和劑量

向血管遞送AAV的方式主要有系統(tǒng)性注射(尾靜脈注射)、原位注射(結(jié)扎法和凝膠孵育),對于腦血管感染還可以采用腦立體定位注射(表3)。

表3 血管遞送AAV的方式


心血管系統(tǒng)的血管部分就介紹到此,大家可以查閱往期內(nèi)容《AAV在心血管疾病研究中的靶向策略》,進一步了解AAV在心臟中的應用策略吧。后續(xù)我們將會給大家?guī)砀囿w內(nèi)不同組織/細胞特異性調(diào)控的干貨,敬請關注。

參考文獻

[1] North BJ, Sinclair DA. The intersection between aging and cardiovascular disease. Circ Res. 2012 Apr 13;110(8):1097-108. doi: 10.1161/CIRCRESAHA.111.246876.

[2] Langen UH, Ayloo S, Gu C. Development and Cell Biology of the Blood-Brain Barrier. Annu Rev Cell Dev Biol. 2019 Oct 6;35:591-613. doi: 10.1146/annurev-cellbio-100617-062608.

[3] Chen S, Kapturczak M, Loiler SA, Zolotukhin S, Glushakova OY, Madsen KM, Samulski RJ, Hauswirth WW, Campbell-Thompson M, Berns KI, Flotte TR, Atkinson MA, Tisher CC, Agarwal A. Efficient transduction of vascular endothelial cells with recombinant adeno-associated virus serotype 1 and 5 vectors. Hum Gene Ther. 2005 Feb;16(2):235-47. doi: 10.1089/hum.2005.16.235.

[4] Chen Q, Zhai H, Li X, Ma Y, Chen B, Liu F, Lai H, Xie J, He C, Luo J, Gao J, Yang Y. Recombinant adeno-associated virus serotype 9 in a mouse model of atherosclerosis: Determination of the optimal expression time in vivo. Mol Med Rep. 2017 Apr;15(4):2090-2096. doi: 10.3892/mmr.2017.6235.

[5] L. Zhang, A. Rossi, L. Lange, N. Meumann, U. Koitzsch, K. Christie, M.A. Nesbit, C.B.T. Moore, U.T. Hacker, M. Morgan, D. Hoffmann, J. Zengel, J.E. Carette, A. Schambach, A. Salvetti, M. Odenthal, and H. Büning. Capsid Engineering Overcomes Barriers Toward Adeno-Associated Virus Vector-Mediated Transduction of Endothelial Cells. Hum Gene Ther. 2019 Sep;30(10):1-46. doi: 10.1089/hum.2019.027.

[6] K?rbelin J, Dogbevia G, Michelfelder S, Ridder DA, Hunger A, Wenzel J, Seismann H, Lampe M, Bannach J, Pasparakis M, Kleinschmidt JA, Schwaninger M, Trepel M. A brain microvasculature endothelial cell-specific viral vector with the potential to treat neurovascular and neurological diseases. EMBO Mol Med. 2016 Jun 1;8(6):609-25. doi: 10.15252/emmm.201506078.

[7] Krolak T, Chan KY, Kaplan L, Huang Q, Wu J, Zheng Q, Kozareva V, Beddow T, Tobey IG, Pacouret S, Chen AT, Chan YA, Ryvkin D, Gu C, Deverman BE. A High-Efficiency AAV for Endothelial Cell Transduction Throughout the Central Nervous System. Nat Cardiovasc Res. 2022 Apr;1(4):389-400. doi: 10.1038/s44161-022-00046-4.

[8] Grucha?a M, Bhardwaj S, Pajusola K, Roy H, Rissanen TT, Kokina I, Kholová I, Markkanen JE, Rutanen J, Heikura T, Alitalo K, Büeler H, Yl?-Herttuala S. Gene transfer into rabbit arteries with adeno-associated virus and adenovirus vectors. J Gene Med. 2004 May;6(5):545-54. doi: 10.1002/jgm.535.

[9] Li Y, Liu XT, Zhang PL, Li YC, Sun MR, Wang YT, Wang SP, Yang H, Liu BL, Wang M, Gao W, Li P. Hydroxysafflor Yellow A Blocks HIF-1α Induction of NOX2 and Protects ZO-1 Protein in Cerebral Microvascular Endothelium. Antioxidants (Basel). 2022 Apr 7;11(4):728. doi: 10.3390/antiox11040728.

[10] Ji QX, Zeng FY, Zhou J, Wu WB, Wang XJ, Zhang Z, Zhang GY, Tong J, Sun DY, Zhang JB, Cao WX, Shen FM, Lu JJ, Li DJ, Wang P. Ferroptotic stress facilitates smooth muscle cell dedifferentiation in arterial remodelling by disrupting mitochondrial homeostasis. Cell Death Differ. 2023 Feb;30(2):457-474. doi: 10.1038/s41418-022-01099-5.

[11] Zhao Y, Xia A, Li C, Long X, Bai Z, Qiu Z, Xiong W, Gu N, Shen Y, Zhao R, Shi B. Methyltransferase like 3-mediated N6-methylatidin methylation inhibits vascular smooth muscle cells phenotype switching via promoting phosphatidylinositol 3-kinase mRNA decay. Front Cardiovasc Med. 2022 Oct 28;9:913039. doi: 10.3389/fcvm.2022.913039.

[12] Remes A, Basha DI, Puehler T, Borowski C, Hille S, Kummer L, Wagner AH, Hecker M, Soethoff J, Lutter G, Frank D, Arif R, Frey N, Zaradzki M, Müller OJ. Alginate hydrogel polymers enable efficient delivery of a vascular-targeted AAV vector into aortic tissue. Mol Ther Methods Clin Dev. 2021 Feb 24;21:83-93. doi: 10.1016/j.omtm.2021.02.017.


心血管系統(tǒng) | 組織(細胞)特異性基因調(diào)控的評論 (共 條)

分享到微博請遵守國家法律
广安市| 且末县| 寿宁县| 连南| 德格县| 察隅县| 华坪县| 青铜峡市| 麟游县| 沙坪坝区| 疏勒县| 渝北区| 博爱县| 鄂伦春自治旗| 文山县| 临沂市| 泰顺县| 肃北| 沙洋县| 汪清县| 杂多县| 新乡县| 阳城县| 呼玛县| 册亨县| 太仆寺旗| 晋江市| 宕昌县| 无棣县| 民丰县| 黄山市| 达州市| 安塞县| 克什克腾旗| 梨树县| 新和县| 甘泉县| 徐水县| 西充县| 咸阳市| 武隆县|