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如何從FFPE樣本中獲得高質(zhì)量核酸

2023-03-13 17:01 作者:上海迪贏生物  | 我要投稿

什么是FFPE樣本

FFPE(Formalin-fixed paraffin-embedding)即用福爾馬林將組織或細胞固定后用石蠟包埋,是一種組織或細胞保存技術(shù)。福爾馬林中的甲醛可以與蛋白質(zhì)的氨基結(jié)合,使蛋白質(zhì)凝固變性,保持組織細胞結(jié)構(gòu)的完整性?[1]。通過FFPE技術(shù)處理得到的樣本我們稱為FFPE樣本,因?qū)嶋H使用時會切成薄片,也稱石蠟切片。


FFPE樣本的應(yīng)用

這項技術(shù)長期以來在臨床檢驗、醫(yī)學科學研究中得到廣泛應(yīng)用,尤其是細胞形態(tài)學研究和腫瘤病理學研究,如:HE染色、免疫組化及熒光原位雜交等。隨著分子生物學的發(fā)展,F(xiàn)FPE樣本在分子診斷及研究的應(yīng)用需求越來越多。目前在NGS醫(yī)檢所中,除去血液樣本,接收的所有組織樣本幾乎均為蠟塊、白片、蠟卷等FFPE樣本。為了保證NGS實驗數(shù)據(jù)的準確性與真實性,從FFPE樣本中純化出高質(zhì)量的核酸十分重要。

圖1.FFPE樣本的多個應(yīng)用場景

影響FFPE樣本中核酸質(zhì)量的因素

一般核酸提取純化有三個質(zhì)檢指標:核酸濃度、核酸純度及核酸完整度,而FFPE樣本由于福爾馬林處理,損傷核酸,影響下游應(yīng)用數(shù)據(jù)的真實性,提高了核酸提取難度。

圖2.影響FFPE樣本中DNA質(zhì)量的因素

一般來說FFPE 樣本可以保存長達數(shù)年時間,但超過一年的FFPE樣本不建議用于NGS實驗。即使在一年內(nèi),隨著保存時間的增加,DNA的片段化也會加劇,因此應(yīng)用于NGS檢測的FFPE樣本應(yīng)該在采樣后盡快完成實驗。


FFPE樣本制備及核酸純化處理

要想從FFPE樣本中提取純化出高質(zhì)量的核酸,首先需要得到高質(zhì)量的FFPE樣本,從FFPE樣本的制備到核酸的提取,我們需要注意以下幾點。


FFPE樣本的制備

01.樣本的選擇

FFPE可以采用新鮮組織樣本或細胞樣本進行制備。對于腫瘤病理組織樣本而言,目的是研究腫瘤細胞,因此在活檢或手術(shù)取組織樣本時腫瘤組織的占比一般要大于20%以上[2],并在取樣后要用生理鹽水沖洗,避免血液中g(shù)DNA污染。周圍炎癥嚴重的腫瘤細胞、黏液產(chǎn)生過多的腫瘤細胞、病變中心廣泛纖維化的腫瘤細胞不能采集,以免產(chǎn)生假陰性結(jié)果。手術(shù)采樣的腫塊組織不低于50mg,穿刺采樣應(yīng)≥2條,長度≥0.5 cm[3]。

02.福爾馬林固定

a.組織新鮮。務(wù)必在組織離體后30min內(nèi)浸入適量組織固定液中進行固定。

b.適當?shù)墓潭ㄒ骸?/strong>液體與組織大小比例為10:1,應(yīng)當使用中性的福爾馬林緩沖溶液,避免使用酸性及含有重金屬離子的固定液,目前市面上有使用多聚甲醛代替。

c.適當?shù)墓潭〞r間。時間較短可能導致標本較深處組織未滲入福爾馬林,而發(fā)生核酸和蛋白降解。固定時間過長則導致更密集的交聯(lián),讓核酸和蛋白的提取變得更加困難。體積較大的標本應(yīng)充分固定至6-48h,但不超過72h,小活檢標本固定6-12h即可[4]。

圖3.固定時間對RNA完整性和一步法RT-PCR的影響[5]。

新鮮組織放入RNA保護液作為對照組,福爾馬林分別固定20h和72h并進行石蠟包埋作為實驗組,利用Agilent? 2100 Bioanalyzer分析。并使用一步法RT-PCR驗證。擴增子大小如圖所示,RT-PCR的結(jié)果以顏色顯示:紅色表示無擴增,黃色表示弱的擴增,綠色表示成功的擴增。盡管較長時間的固定對RNA片段化和核糖體條帶影響甚微,但較長擴增子的擴增效率差。推測由于RNA分子的過度交聯(lián)和較高比例的不可逆交聯(lián)導致。

d.合適的組織大小。福爾馬林大約以1 mm/小時的速率滲透組織,通常建議固定最多5 mm厚的組織標本。

圖4.樣品厚度對RNA完整性的影響[5]。

將大鼠的腎與腦組織整個器官(whole)與≤4 mm的器官切片(cut)分別進行福爾馬林固定和石蠟包埋。左圖包埋后3天純化RNA,并利用Agilent? 2100 Bioanalyzer分析。在整個腦組織(whole Brain)的電泳峰圖中,雙箭頭指出了18S rRNA和28S rRNA的峰減少,表明RNA片段化的增加。右圖純化的RNA被用于一步法RT-PCR中,從左到右,擴增子大小分別為96nt、206nt、400nt、613nt和785nt。從圖可以看出較大片段的RNA存在降解。


FFPE樣本的核酸純化

01.脫蠟(脫蠟要徹底)

因為FFPE樣本的特殊性,石蠟會阻礙消化液對組織的滲透,抑制蛋白酶K對組織內(nèi)蛋白質(zhì)的消化,從而影響核酸的釋放。為消除石蠟對DNA提取和PCR擴增的不良影響,對組織進行徹底的脫蠟十分重要。傳統(tǒng)的脫蠟方式為二甲苯脫蠟,二甲苯脫蠟不僅容易造成核酸片段化和得率低,而且對人有毒害,切片越厚或存放時間越長,脫蠟效果越差。目前市面上主流方案是采用無毒脫蠟液,以及Covaris的超聲乳化脫蠟。

02.組織消化

為了將DNA與結(jié)合的蛋白質(zhì)分離,F(xiàn)FPE樣本需經(jīng)受高溫和蛋白酶K消化。蛋白酶K可以消化蛋白質(zhì)組分以及樣品中可能存在的任何核酸酶,這個步驟還可防止DNA發(fā)生降解。對消化時間進行優(yōu)化十分重要。消化的時間過短,DNA的釋放不充分,導致核酸提取的得率低。消化時間可以根據(jù)組織類型、組織大小進行調(diào)節(jié),使DNA充分釋放。

03.解交聯(lián)

由于FFPE樣品包含的DNA分子會彼此交聯(lián),并與RNA和蛋白質(zhì)分子交聯(lián),故這些交聯(lián)必須斷裂,才能釋放出DNA用于后續(xù)純化。建議在80℃的環(huán)境下,孵育樣品一個小時,以達到逆轉(zhuǎn)交聯(lián)的目的。

圖5.福爾馬林固定對DNA、RNA和蛋白的影響。

福爾馬林固定導致核酸之間、蛋白之間以及核酸和蛋白之間的交聯(lián)。固定時間越長,交聯(lián)程度越大,純化難度越大。

04.核酸的提取

核酸的提取有多種成熟的方法,包括酚氯仿抽提法、柱膜法、磁珠法等等,各方法在提取FFPE樣本核酸時沒有太大差異,只需要根據(jù)自己的實驗需要選擇即可。

05.質(zhì)控

對提取出來的核酸進行質(zhì)控十分重要,對于FFPE樣本中提取的核酸,通過吸光度檢測樣品純度(Nanodrop),熒光定量(Qubit)及毛細管電泳儀進行測定核酸濃度、OD值(純度)及片段大?。―IN),除此之外還可參考Alu247/Alu115和Q Score。


Alu247/Alu115:Alu序列是廣泛分布于人基因組的約300bp短重復(fù)序列。通過長(247 bp; Alu247)、短(115 bp; Alu115)擴增子比值可評估gDNA的完整度。

Q Score:即Quality Score,是指不同qPCR擴增產(chǎn)物濃度的比值。常用的Q129/Q41和Q305/Q41比值分別指129bp和41bp產(chǎn)物、305bp和41bp產(chǎn)物濃度比值。

圖6.FFPE樣本核酸純化流程圖

FFPE樣本的在NGS中應(yīng)用

上面有提到由于福爾馬林的固定導致FFPE樣本提取核酸存在的問題,如DNA斷裂、胞嘧啶(C)脫氨基、無堿基位點的產(chǎn)生等,均可能導致得到錯誤的核酸信息,特別是脫氨基導致的C:G > T:A人為突變。而這些不真實的DNA信息導致形成FFPE DNA序列偽影(sequence artifacts)。序列偽影是由固定、包埋等過程人為引入的序列突變[6],具體表現(xiàn)為NGS結(jié)果中DNA序列出現(xiàn)了一些在固定之前不存在的堿基變化,這些人為突變使NGS檢測出現(xiàn)假陰性和假陽性的問題。Lamy和他的同事研究發(fā)現(xiàn),在993例福爾馬林固定的結(jié)直腸癌中,有53例(5%)存在KRAS基因密碼子12和13人工變異(14例)。

雖然FFPE在NGS檢測中存在偽影的問題,但FFPE樣本的易保存性以及臨床中與病理緊密關(guān)系使這種類型樣本的應(yīng)用仍有很大優(yōu)勢,那如何提高FFPE樣本在NGS檢測中的準確度呢?在降低FFPE樣本中DNA的損傷方法中總結(jié)如下圖:

圖7.降低FFPE DNA損傷方法


總結(jié)

如何從FFPE樣本中提取出高質(zhì)量的核酸,下圖對本文重點進行總結(jié):

圖8.FFPE樣本提取核酸小結(jié)


參考文獻

[1] M?j C, W L,?L D, X L. Tissue Requirements and DNA Quality Control for Clinical Targeted?Next-Generation Sequencing of Formalin-Fixed, Paraffin-Embedded Samples: AMini-Review of Practical Issues. Journal of Molecular and Genetic Medicine.2017;11(2).

[2] 中國臨床腫瘤學會非小細胞肺癌專家委員會. 二代測序技術(shù)在NSCLC中的臨床應(yīng)用中國專家共識(2020版)[J]. 中國肺癌雜志, 2020(9).

[3] Benson AB 3rd, Venook AP, Bekaii Saab T, et al.Rectal cancer, version 2.?2015[J].J Natl Compr Canc Netw, 2015, 13(6):719728.

[4] 王恩華, 朱明華等. 非小細胞肺癌靶向藥物治療相關(guān)基因檢測的規(guī)范建議[J]. 中華病理學雜志, 2016, 45(002):73-77.

[5] von Ahlfen S, Missel A, Bendrat K, Schlumpberger M. Determinants of RNA quality from FFPE samples. PLoS One. 2007 Dec 5;2(12):e1261. doi: 10.1371/journal.pone.0001261. PMID: 18060057; PMCID: PMC2092395.

[6] Do H, Dobrovic A. Sequence artifacts in DNA from formalin-fixed tissues: causes and strategies for minimization. Clin Chem. 2015 Jan;61(1):64-71. doi: 10.1373/clinchem.2014.223040. Epub 2014 Nov 24. PMID: 25421801.

[7] Lamy A, Blanchard F, Le Pessot F, Sesboüé R, Di Fiore F, Bossut J, Fiant E, Frébourg T, Sabourin JC. Metastatic colorectal cancer KRAS genotyping in routine practice: results and pitfalls. Mod Pathol. 2011 Aug;24(8):1090-100. doi: 10.1038/modpathol.2011.60. Epub 2011 Apr 22. PMID: 21516079.

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