老年人必看!如何預防慢性炎癥?世界頂級老齡化研究所為您解析
隨著年齡增長,慢性炎癥逐漸成為困擾人們的問題,也是衰老研究領域的學者們重點關注的話題。2023年更新的“衰老十二大標識”中新增了“慢性炎癥”板塊,曾有學者預言,它的加入是一種必然。
慢性炎癥不僅是近年衰老研究的熱點,更與其他衰老標識有著莫大的關聯(lián)。接下來我們就跟隨世界頂尖老齡化研究中心巴克研究所近日發(fā)表的一篇綜述,開啟抗炎、抗衰之旅。
這篇綜述發(fā)表于權威期刊Molecular metabolism,系統(tǒng)說明了衰老如何導致機體的促炎和抗炎機制失衡,造成慢性炎癥,不斷推進衰老進程。并特別將其與“衰老十二大標識”中的其他標識聯(lián)合闡述,整理成分子機制網(wǎng)絡,為人們理解衰老、干預衰老提供了新的見解和靶點[1]。派派將其梳理如下,供讀者參考。
PART 1 衰老標識:基本、拮抗與綜合
理解慢性炎癥與其他衰老標識之間的具體關系,先從什么是“衰老標識”講起。(如果已經(jīng)了解衰老標識,可跳至下一部分綜述正文)
衰老標識是與衰老進程密切相關的、造成機體損傷的生物標志物,分為三類:基本標識、拮抗標識和綜合標識[2]。
基本標識是指無論單獨或協(xié)同作用均可導致分子和細胞水平的損傷的衰老標識,包括基因組不穩(wěn)定、端粒磨損、表觀遺傳改變、蛋白質(zhì)穩(wěn)態(tài)失衡及巨自噬失活。
拮抗標識是指對基本標識造成的損害的反應,最初有助于減輕損害,但長時間激活、積累反而會造成損害,導致衰老。包括營養(yǎng)感知失調(diào)、線粒體功能障礙和細胞衰老。
綜合標識是指,當衰老組織的穩(wěn)態(tài)機制無法解決基本標識和拮抗標識造成的損害時,就會出現(xiàn)的標識。包括細胞間通訊改變、腸道微生物失調(diào)、干細胞耗竭及慢性炎癥。
圖注:衰老十二大標識的分類,慢性炎癥屬于綜合標識。Primary: 基本;Antagonistic: 拮抗;Integrative: 綜合。
PART 2 慢性炎癥與三類衰老標識的相互作用關系
慢性炎癥來源于機體為了消除損傷開啟的免疫反應,初衷是為了“滅火”。但當體內(nèi)的“著火點”越來越多、“火”越燒越旺時(損傷不斷積累),小范圍的免疫反應就變成了侵蝕全身的慢性炎癥。
不僅如此,“小火慢烤”還可誘發(fā)多種疾病,更與衰老的標志性表現(xiàn)“虛弱(frailty)”密切相關。下面派派將介紹慢性炎癥如何與上述三類衰老標識相互作用,促進衰老[1],并在文中提供可干預甚至逆轉衰老標識的“抗炎密碼”。
1.基本標識
基因組不穩(wěn)定
首先是慢性炎癥與細胞內(nèi)的關鍵遺傳物質(zhì)——DNA之間的相互作用。DNA損傷會導致慢性炎癥,慢性炎癥又會加速DNA損傷。
DNA單鏈斷裂可激活“DNA斷裂傳感器”PARP1,此分子的持續(xù)激活會耗盡NAD+,從而抑制下游Sirtuin(Sirt)活性。
Sirt3和Sirt5的耗竭可促進線粒體DNA損傷的積累,導致線粒體功能障礙相關的促炎細胞因子譜。Sirt2的功能受損也會導致NLRP3炎癥小體活性升高,加速細胞衰老和改變Sirt依賴性營養(yǎng)感知途徑。
除了Sirt途徑之外,滲漏進細胞質(zhì)的DNA還會促使干擾素基因(STING)通路的環(huán)GMP-AMP合酶(cGAS)激活TBK1和IRF3,從而誘導I型干擾素(IFN)反應和NF-κB級聯(lián)反應。
圖注:慢性炎癥與衰老標識相互作用的分子機制圖譜。NF-κB堪稱樞紐。
NF-κB是衰老相關炎癥因子,與IL-4、TGF-β等炎癥因子共同促進DNA突變酶AID的表達。AID原本作用于活化B細胞,通過誘導免疫球蛋白基因中的體細胞超突變和類轉換重組來產(chǎn)生免疫多樣性,然而在慢性炎癥條件下,其可在上皮細胞中異常表達,并誘導體細胞突變和染色體畸變。
研究表明,AID在幾種炎癥相關癌癥,如胃癌[3]、結腸癌[4]和胰腺癌[5]中過表達。
抗炎密碼
抑制NF-κB途徑,具體物質(zhì)"衣康酸鹽"將與下文“線粒體功能障礙”部分聯(lián)合闡述。
端粒磨損
端??s短會導致炎癥。衰老過程中的端粒磨損會激活p53,從而抑制PGC-1α和Sirt3/4/5,損害線粒體功能并導致ROS過量產(chǎn)生,由此產(chǎn)生的氧化應激會促進炎癥并進一步損害端粒結構。
T細胞的端??s短與慢性炎癥密切相關[6]。幼稚T細胞數(shù)量減少、T細胞受體多樣性降低和衰老T細胞的積累促進慢性炎癥的產(chǎn)生[7],導致免疫系統(tǒng)對新出現(xiàn)的抗原(例如SARS-CoV-2)的免疫反應受損[8],這在一定程度上解釋了老年人更易感染新冠的原因。
炎癥也會導致端??s短。研究表明,慢性炎癥標志物,如 TNF-α和IL-6,與非癌細胞中端粒縮短有關[9]。TNF-α通過p38磷酸化ATF7,下調(diào)端粒酶活性[10]。衰老相關炎癥因子NF-κB的持續(xù)激活也會導致肌肉干細胞(MuSC)和肝細胞端??s短[11-12]。
表觀遺傳改變
隨著衰老研究深入,越來越多證據(jù)表明,衰老相關表觀遺傳改變利于慢性炎癥的形成,而慢性炎癥又可改變表觀遺傳模式[13]。
表觀遺傳模式中,DNA甲基化改變與衰老尤為相關。DNA低甲基化和高甲基化均與衰老有關,其中DNA低甲基化可部分歸因于DNA甲基轉移酶DNMT-1 和 DNMT-3B活性降低[14]。DNA甲基化改變可激活參與炎癥反應的基因,如NF-κB、巨噬細胞激活和IFN信號傳導相關基因[15]。
慢性炎癥也會導致DNA甲基化異常。最近,一項多種族表觀基因組關聯(lián)研究表明,慢性炎癥期間C反應蛋白(CRP)升高可致DNA甲基化模式改變,這種炎癥甲基化特征可以顯著增加心血管疾病和慢性阻塞性肺?。–OPD)的風險[16]。
蛋白質(zhì)穩(wěn)態(tài)失衡
蛋白質(zhì)穩(wěn)態(tài)是確保蛋白質(zhì)正確合成與折疊、錯誤折疊蛋白重新折疊和降解的細胞內(nèi)外調(diào)節(jié)網(wǎng)絡[17]。隨著衰老,蛋白質(zhì)穩(wěn)態(tài)的兩個方面——折疊和降解都會減少,導致受損蛋白質(zhì)和細胞器(也就是細胞內(nèi)“垃圾”)的累積,此現(xiàn)象稱為“垃圾老化”(Garb-aging),會加劇炎癥[18]。
泛素蛋白水解系統(tǒng)(UPS)和自噬溶酶體系統(tǒng)(ALS)在蛋白質(zhì)降解中起著重要作用[19]。隨著細胞衰老,受損蛋白不斷積累,干擾這兩種系統(tǒng)的正常工作,導致多種組織炎癥,例如帕金森病中的神經(jīng)炎癥[20]和衰老相關分泌表型(SASP)誘導的炎癥[21]。
抗炎密碼
激活自噬,清除“垃圾老化”!具體見下一部分。
巨自噬失活
自噬是蛋白質(zhì)穩(wěn)態(tài)系統(tǒng)的重要組成部分,自噬的細胞質(zhì)清理功能具有抗炎作用[22]。
研究發(fā)現(xiàn),老人的CD4+T細胞自噬能力下降,受損線粒體不能被及時清除,導致ROS生成和NF-κB激活,引發(fā)慢性炎癥和免疫衰老[23]。
抗炎密碼
亞精胺可誘導轉錄因子TFEB合成,激活自噬并逆轉B細胞衰老[24],改善免疫功能。
2.拮抗標識
營養(yǎng)感知失調(diào)
營養(yǎng)與長壽的關系一直備受大家關注。長期營養(yǎng)過剩促衰,而熱量限制則有利于長壽。
前文所述Sirt途徑與營養(yǎng)感知密切相關。熱量限制可通過增加AMP:ATP的比率激活AMPK-Sirtuin通路。Sirtuin是NAD+依賴性脫乙酰酶,AMPK激活可以增加NAD+濃度,導致Sirt1表達,從而使 AMPK上游激活劑LKB-1去乙?;纬烧答伝芈?。
從功能上說,AMPK激活可以通過激活TSC1/2來抑制mTORC1,并刺激Sirts去乙?;?/span>FoxO或自噬相關蛋白(ATG5和ATG7),維持細胞內(nèi)能量穩(wěn)態(tài)。
圖注:FoxO是調(diào)節(jié)細胞死亡、氧化應激、糖代謝、DNA修復等重要過程的關鍵轉錄因子。圖源[25]
最近研究發(fā)現(xiàn),AMPK直接磷酸化卵泡素相互作用蛋白1(FNIP1),該蛋白與卵泡蛋白(FLCN)形成復合物以抑制溶酶體表面mTOR復合物的功能。通過這種作用機制,AMPK能夠促進轉錄因子TFEB介導的自噬并誘導溶酶體和線粒體生物發(fā)生[26]。
而高葡萄糖、脂質(zhì)和氨基酸水平、革蘭氏陰性細菌重要外膜成分脂多糖(LPS),以及高促炎細胞因子(如TNF-α和NF-κB)水平,也可以抑制AMPK活性[28-30]。
抗炎密碼
二甲雙胍可激活AMPK,通過增強T細胞自噬,使線粒體功能正?;徑饽挲g和衰老相關的炎癥[27]。因此,AMPK-Sirt通路在調(diào)節(jié)慢性炎癥中起著重要作用。
線粒體功能障礙
一種學說認為,線粒體起源于17億年前融合進真核細胞內(nèi)的古細菌,所以含有獨立的遺傳物質(zhì)mtDNA[31]。
所以線粒體內(nèi)容物可被視作“外來物”,一旦線粒體受損,內(nèi)容物滲漏進細胞質(zhì),就成為損傷相關分子模式(DAMPs),誘發(fā)炎癥。mtDNA、線粒體蛋白N-甲酰肽和獨特的線粒體脂質(zhì)(如心磷脂)均為線粒體DAMPs。
當細胞內(nèi)ROS增多導致mtDNA和心磷脂釋放到細胞質(zhì)中時,各種炎癥途徑被激活,包括NLRP3炎癥小體、cGAS-STING通路、和NF-κB[32-33]。
抗炎密碼
衣康酸鹽(亞甲基琥珀酸鹽)可抑制NF-κB途徑,具有抗炎作用[34]。衣康酸鹽通過直接修飾參與NF-κB信號傳導的關鍵蛋白質(zhì)(如IKK和Keap1)上的特定半胱氨酸殘基,抑制NF-κB活化,從而抑制促炎基因的表達;還可激活抗炎轉錄因子NRF-2,NRF-2誘導抗氧化和抗炎基因(包括GPX1和SOD1)的表達[35]。
圖注:衣康酸分子式
細胞衰老
衰老細胞可分泌一系列特異性因子,稱為衰老相關分泌表型(SASP)。SASP被認為可以促進免疫細胞的募集和激活,從而清除衰老細胞。當清除失敗時,衰老細胞和SASP積累,導致組織功能下降,促進炎癥產(chǎn)生。
促炎SASP包括但不限于IL6、IL8、IL1、粒細胞-巨噬細胞集落刺激因子(GM-CSF)、生長-調(diào)節(jié)癌基因(growth-regulated oncogene,GRO)α、單核細胞趨化蛋白(MCP)-2、MCP-3、基質(zhì)金屬蛋白酶(MMP)-9/1/3和幾個IGF結合蛋白[36-37]。
值得注意的是,并非所有SASP都有害。研究表明,衰老細胞還可以分泌刺激組織修復和上皮再生的因子[38]。所以應謹慎使用清除衰老細胞藥物Senolytics,不加篩選地清除衰老細胞可能會損害一部分有益作用。
抗炎密碼
葡萄籽中的原花青素可清除衰老細胞[55]。
3.綜合標識
細胞間通訊改變
細胞間信號傳導有多種方式,這里簡要介紹慢性炎癥與激素和細胞外囊泡之間的聯(lián)系。
下丘腦-垂體軸(HPA)是機體能量平衡、體溫、睡眠、血壓和晝夜節(jié)律穩(wěn)態(tài)的主要調(diào)節(jié)器。下丘腦微炎癥可導致衰老相關的全身慢性炎癥及穩(wěn)態(tài)失衡,尤其會導致代謝綜合征[39]。另外,雌激素和睪酮的下降也可能促進炎癥[40-41]。
細胞外囊泡是衰老研究中的新興領域,其來源于多泡體或脂質(zhì)膜,內(nèi)含蛋白質(zhì)、脂質(zhì)和核苷酸。細胞外囊泡可傳遞促炎介質(zhì),促進腫瘤和自身免疫性疾病的發(fā)生發(fā)展[42]。
抗炎密碼
干細胞或“年輕”細胞來源的細胞外囊泡可延長健康壽命,比如間充質(zhì)干細胞來源的小細胞外囊泡可減輕氧化應激誘導的內(nèi)皮細胞衰老[43]。
干細胞耗竭
干細胞是可再生細胞,可替換各種組織和器官中的受損細胞,促進組織修復。慢性炎癥可導致干細胞過早衰老,加速干細胞耗竭,而抑制NF-κB可恢復衰老的干細胞功能[44-45]。
干細胞重編程也可起到抗炎與抗衰功效。多項體內(nèi)和體外研究已證明,“山中因子”Oct3/4、Sox2、Klf4、c-Myc誘導的瞬時重編程在小鼠和人類細胞中導致表觀遺傳時鐘顯著逆轉,炎癥特征減少,并恢復患病或衰老細胞失去的功能[46-48]。
除了重編程以外,將年輕小鼠的糞便微生物群移植到老年小鼠體內(nèi),也被證明可恢復衰老造血干細胞再生能力[49]。
腸道微生物失調(diào)
越來越多的證據(jù)表明,腸道微生物失調(diào)與腸道屏障受損、肥胖和慢性炎癥性疾病密切相關[50]。腸道微生物組可衡量健康個體的衰老程度,并且腸道微生物組時鐘顯示,Ⅰ型糖尿病患者衰老加速[51]。
除了腸道微生物會對神經(jīng)系統(tǒng)衰老產(chǎn)生影響,口腔微生物也與神經(jīng)系統(tǒng)炎癥和神經(jīng)退行性疾?。ㄈ绨柎暮D。┯嘘P。口腔中的變形鏈球菌和牙齦卟啉單胞菌與β-淀粉樣蛋白的形成及其在大腦中的積累、tau蛋白磷酸化以及阿爾茨海默病患者的神經(jīng)炎癥有關[52]。
抗炎密碼
丁酸(Butyrate)是一種可起到抗炎作用的微生物代謝物,可抑制NF-κB通路[53]并調(diào)節(jié)輔助性T細胞17(Th17)和調(diào)節(jié)性T細胞(Treg)分化。普拉梭菌可產(chǎn)生丁酸,此物質(zhì)已被證明可改善結腸炎[54]。
圖注:普拉梭菌衍生的丁酸鹽對結腸炎的抗炎作用示意圖。
時光派點評
我們的細胞浸潤在細胞外液構成的內(nèi)環(huán)境中。在慢性炎癥條件下,炎性細胞因子充斥在細胞周圍的液體環(huán)境中,造成從細胞到組織、從組織到器官層面的系統(tǒng)性功能紊亂。
了解慢性炎癥及其與其他衰老標識之間的相互作用,有助于我們更深刻地理解衰老、延緩衰老。
測衰才能抗衰,時光派最新推出的“時光尺3.0”服務建立了完整的五維檢測體系,其中包含“炎性與免疫衰老”一大板塊,系統(tǒng)檢測慢性炎癥問題,歡迎您的關注。
參考文獻:
[1] Baechle, J., Chen, N., Makhijani, P., Winer, S., Furman, D., & Winer, D. (2023). Chronic inflammation and the hallmarks of aging. Molecular Metabolism, 101755. doi: 10.1016/j.molmet.2023.101755
[2] López-Otín, C., Blasco, M., Partridge, L., Serrano, M., & Kroemer, G. (2023). Hallmarks of aging: An expanding universe. Cell, 186(2), 243-278. doi: 10.1016/j.cell.2022.11.001
[3] Chiba, T., Marusawa, H., & Ushijima, T. (2012). Inflammation-Associated Cancer Development in Digestive Organs: Mechanisms and Roles for Genetic and Epigenetic Modulation. Gastroenterology, 143(3), 550-563. doi: 10.1053/j.gastro.2012.07.009
[4] Gushima, M., Hirahashi, M., Matsumoto, T., Fujita, K., Ohuchida, K., Oda, Y., Yao, T., Iida, M., & Tsuneyoshi, M. (2011). Expression of activation-induced cytidine deaminase in ulcerative colitis-associated carcinogenesis. Histopathology, 59(3), 460–469. doi: 10.1111/j.1365-2559.2011.03965.x
[5] Sawai, Y., Kodama, Y., Shimizu, T., Ota, Y., Maruno, T., & Eso, Y. et al. (2015). Activation-Induced Cytidine Deaminase Contributes to Pancreatic Tumorigenesis by Inducing Tumor-Related Gene Mutations. Cancer Research, 75(16), 3292-3301. doi: 10.1158/0008-5472.can-14-3028
[6] Mittelbrunn, M., & Kroemer, G. (2021). Hallmarks of T cell aging. Nature Immunology, 22(6), 687-698. doi: 10.1038/s41590-021-00927-z
[7] Laphanuwat, P., Gomes, D. C. O., & Akbar, A. N. (2023). Senescent T cells: Beneficial and detrimental roles. Immunological reviews, 10.1111/imr.13206. Advance online publication. doi: 10.1111/imr.13206
[8] Aviv, A. (2022). The bullwhip effect, T-cell telomeres, and SARS-CoV-2. The Lancet Healthy Longevity, 3(10), e715-e721. doi: 10.1016/s2666-7568(22)00190-8
[9] Slusher, A., Zú?iga, T., & Acevedo, E. (2019). Inflamm-Aging Is Associated with Lower Plasma PTX3 Concentrations and an Impaired Capacity of PBMCs to Express hTERT following LPS Stimulation. Mediators Of Inflammation, 2019, 1-13. doi: 10.1155/2019/2324193
[10] Maekawa, T., Liu, B., Nakai, D., Yoshida, K., Nakamura, K., & Yasukawa, M. et al. (2018). ATF7 mediates TNF-α–induced telomere shortening. Nucleic Acids Research, 46(9), 4487-4504. doi: 10.1093/nar/gky155
[11] Tichy, E., Ma, N., Sidibe, D., Loro, E., Kocan, J., & Chen, D. et al. (2021). Persistent NF-κB activation in muscle stem cells induces proliferation-independent telomere shortening. Cell Reports, 35(6), 109098. doi: 10.1016/j.celrep.2021.109098
[12] Jurk, D., Wilson, C., Passos, J., Oakley, F., Correia-Melo, C., & Greaves, L. et al. (2014). Chronic inflammation induces telomere dysfunction and accelerates ageing in mice. Nature Communications, 5(1). doi: 10.1038/ncomms5172
[13] Nardini, C., Moreau, J., Gensous, N., Ravaioli, F., Garagnani, P., & Bacalini, M. (2018). The epigenetics of inflammaging: The contribution of age-related heterochromatin loss and locus-specific remodelling and the modulation by environmental stimuli. Seminars In Immunology, 40, 49-60. doi: 10.1016/j.smim.2018.10.009
[14] Saul, D., & Kosinsky, R. (2021). Epigenetics of Aging and Aging-Associated Diseases. International Journal Of Molecular Sciences, 22(1), 401. doi: 10.3390/ijms22010401
[15] Sarkar, A., Liu, N. Q., Magallanes, J., Tassey, J., Lee, S., Shkhyan, R., Lee, Y., Lu, J., Ouyang, Y., Tang, H., Bian, F., Tao, L., Segil, N., Ernst, J., Lyons, K., Horvath, S., & Evseenko, D. (2023). STAT3 promotes a youthful epigenetic state in articular chondrocytes. Aging cell, 22(2), e13773. doi: 10.1111/acel.13773
[16] Wielscher, M., Mandaviya, P., Kuehnel, B., Joehanes, R., Mustafa, R., & Robinson, O. et al. (2022). DNA methylation signature of chronic low-grade inflammation and its role in cardio-respiratory diseases. Nature Communications, 13(1). doi: 10.1038/s41467-022-29792-6
[17] Frankowska, N., Lisowska, K., & Witkowski, J. (2022). Proteolysis dysfunction in the process of aging and age-related diseases. Frontiers In Aging, 3. doi: 10.3389/fragi.2022.927630
[18] Franceschi, C., Garagnani, P., Vitale, G., Capri, M., & Salvioli, S. (2017). Inflammaging and ‘Garb-aging’. Trends In Endocrinology &Amp; Metabolism, 28(3), 199-212. doi: 10.1016/j.tem.2016.09.005
[19] Frankowska, N., Lisowska, K., & Witkowski, J. (2022). Proteolysis dysfunction in the process of aging and age-related diseases. Frontiers In Aging, 3. doi: 10.3389/fragi.2022.927630
[20] Kulkarni, A., Preeti, K., Tryphena, K., Srivastava, S., Singh, S., & Khatri, D. (2023). Proteostasis in Parkinson's disease: Recent development and possible implication in diagnosis and therapeutics. Ageing Research Reviews, 84, 101816. doi: 10.1016/j.arr.2022.101816
[21] Abbadie, C., & Pluquet, O. (2020). Unfolded Protein Response (UPR) Controls Major Senescence Hallmarks. Trends In Biochemical Sciences, 45(5), 371-374. doi: 10.1016/j.tibs.2020.02.005
[22] Deretic, V., & Levine, B. (2018). Autophagy balances inflammation in innate immunity. Autophagy, 14(2), 243–251. doi: 10.1080/15548627.2017.1402992
[23] Bektas, A., Schurman, S. H., Gonzalez-Freire, M., Dunn, C. A., Singh, A. K., Macian, F., Cuervo, A. M., Sen, R., & Ferrucci, L. (2019). Age-associated changes in human CD4+ T cells point to mitochondrial dysfunction consequent to impaired autophagy. Aging, 11(21), 9234–9263. doi: 10.18632/aging.102438
[24] Zhang, H., Alsaleh, G., Feltham, J., Sun, Y., Napolitano, G., Riffelmacher, T., Charles, P., Frau, L., Hublitz, P., Yu, Z., Mohammed, S., Ballabio, A., Balabanov, S., Mellor, J., & Simon, A. K. (2019). Polyamines Control eIF5A Hypusination, TFEB Translation, and Autophagy to Reverse B Cell Senescence. Molecular cell, 76(1), 110–125.e9. doi: 10.1016/j.molcel.2019.08.005
[25] Carter, M. E., & Brunet, A. (2007). FOXO transcription factors. Current Biology, 17(4), R113-R114.
[26] Malik, N., Ferreira, B. I., Hollstein, P. E., Curtis, S. D., Trefts, E., Weiser Novak, S., Yu, J., Gilson, R., Hellberg, K., Fang, L., Sheridan, A., Hah, N., Shadel, G. S., Manor, U., & Shaw, R. J. (2023). Induction of lysosomal and mitochondrial biogenesis by AMPK phosphorylation of FNIP1. Science (New York, N.Y.), 380(6642), eabj5559. doi: 10.1126/science.abj5559
[27] Bharath, L. P., Agrawal, M., McCambridge, G., Nicholas, D. A., Hasturk, H., Liu, J., Jiang, K., Liu, R., Guo, Z., Deeney, J., Apovian, C. M., Snyder-Cappione, J., Hawk, G. S., Fleeman, R. M., Pihl, R. M. F., Thompson, K., Belkina, A. C., Cui, L., Proctor, E. A., Kern, P. A., … Nikolajczyk, B. S. (2020). Metformin Enhances Autophagy and Normalizes Mitochondrial Function to Alleviate Aging-Associated Inflammation. Cell metabolism, 32(1), 44–55.e6. doi: 10.1016/j.cmet.2020.04.015
[28] Sag, D., Carling, D., Stout, R., & Suttles, J. (2008). Adenosine 5′-Monophosphate-Activated Protein Kinase Promotes Macrophage Polarization to an Anti-Inflammatory Functional Phenotype. The Journal Of Immunology, 181(12), 8633-8641. doi: 10.4049/jimmunol.181.12.8633
[29] Nath, N., Khan, M., Rattan, R., Mangalam, A., Makkar, R., & Meester, C. et al. (2009). Loss of AMPK exacerbates experimental autoimmune encephalomyelitis disease severity. Biochemical And Biophysical Research Communications, 386(1), 16-20. doi: 10.1016/j.bbrc.2009.05.106
[30] Viollet, B., Horman, S., Leclerc, J., Lantier, L., Foretz, M., Billaud, M., Giri, S., & Andreelli, F. (2010). AMPK inhibition in health and disease. Critical reviews in biochemistry and molecular biology, 45(4), 276–295. doi: 10.3109/10409238.2010.488215
[31] Dyall, S. D., Brown, M. T., & Johnson, P. J. (2004). Ancient invasions: from endosymbionts to organelles. Science (New York, N.Y.), 304(5668), 253–257. doi: 10.1126/science.1094884
[32] Marchi, S., Guilbaud, E., Tait, S., Yamazaki, T., & Galluzzi, L. (2022). Mitochondrial control of inflammation. Nature Reviews Immunology, 23(3), 159-173. doi: 10.1038/s41577-022-00760-x
[33] Yu, J., Nagasu, H., Murakami, T., Hoang, H., Broderick, L., Hoffman, H. M., & Horng, T. (2014). Inflammasome activation leads to Caspase-1-dependent mitochondrial damage and block of mitophagy. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 111(43), 15514–15519. doi: 10.1073/pnas.1414859111
[34] Melguizo Madrid, E., González-Rodríguez, C., ávila-García, M. G., Arrobas-Velilla, T., & Fernández-Riejos, P. (2017). Zenit RA evaluation, a solid-phase chemiluminescence immunoassay for detection of anti-cellular antibodies. Bioanalysis, 9(5), 435–445. doi: 10.4155/bio-2016-0252
[35] Tegegne, M., Fekadu, S., & Assem, A. (2021). Prevalence of Strabismus and Its Associated Factors Among School-Age Children Living in Bahir Dar City: A Community-Based Cross-Sectional Study. Clinical Optometry, Volume 13, 103-112. doi: 10.2147/opto.s300124
[36] Basisty, N., Kale, A., Jeon, O. H., Kuehnemann, C., Payne, T., Rao, C., Holtz, A., Shah, S., Sharma, V., Ferrucci, L., Campisi, J., & Schilling, B. (2020). A proteomic atlas of senescence-associated secretomes for aging biomarker development. PLoS biology, 18(1), e3000599. doi: 10.1371/journal.pbio.3000599
[37] Schafer, M., Zhang, X., Kumar, A., Atkinson, E., Zhu, Y., & Jachim, S. et al. (2020). The senescence-associated secretome as an indicator of age and medical risk. JCI Insight, 5(12). doi: 10.1172/jci.insight.133668
[38] Reyes, N. S., Krasilnikov, M., Allen, N. C., Lee, J. Y., Hyams, B., Zhou, M., Ravishankar, S., Cassandras, M., Wang, C., Khan, I., Matatia, P., Johmura, Y., Molofsky, A., Matthay, M., Nakanishi, M., Sheppard, D., Campisi, J., & Peng, T. (2022). Sentinel p16INK4a+ cells in the basement membrane form a reparative niche in the lung. Science (New York, N.Y.), 378(6616), 192–201. doi: 10.1126/science.abf3326
[39] Tang, Y., Purkayastha, S., & Cai, D. (2015). Hypothalamic microinflammation: a common basis of metabolic syndrome and aging. Trends In Neurosciences, 38(1), 36-44. doi: 10.1016/j.tins.2014.10.002
[40] P Priyanka, H., & S Nair, R. (2020). Neuroimmunomodulation by estrogen in health and disease. AIMS Neuroscience, 7(4), 401-417. doi: 10.3934/neuroscience.2020025
[41] Walecki, M., Eisel, F., Klug, J., Baal, N., Paradowska-Dogan, A., Wahle, E., Hackstein, H., Meinhardt, A., & Fijak, M. (2015). Androgen receptor modulates Foxp3 expression in CD4+CD25+Foxp3+ regulatory T-cells. Molecular biology of the cell, 26(15), 2845–2857. doi: 10.1091/mbc.E14-08-1323
[42] Makhijani, P., & McGaha, T. L. (2022). Myeloid Responses to Extracellular Vesicles in Health and Disease. Frontiers in immunology, 13, 818538. doi: 10.3389/fimmu.2022.818538
[43] Xiao, X., Xu, M., Yu, H., Wang, L., Li, X., Rak, J., Wang, S., & Zhao, R. C. (2021). Mesenchymal stem cell-derived small extracellular vesicles mitigate oxidative stress-induced senescence in endothelial cells via regulation of miR-146a/Src. Signal transduction and targeted therapy, 6(1), 354. doi: 10.1038/s41392-021-00765-3
[44] Bogeska, R., Mikecin, A. M., Kaschutnig, P., Fawaz, M., Büchler-Sch?ff, M., Le, D., Ganuza, M., Vollmer, A., Paffenholz, S. V., Asada, N., Rodriguez-Correa, E., Frauhammer, F., Buettner, F., Ball, M., Knoch, J., St?ble, S., Walter, D., Petri, A., Carre?o-Gonzalez, M. J., Wagner, V., … Milsom, M. D. (2022). Inflammatory exposure drives long-lived impairment of hematopoietic stem cell self-renewal activity and accelerated aging. Cell stem cell, 29(8), 1273–1284.e8. doi: 10.1016/j.stem.2022.06.012
[45] Josephson, A. M., Bradaschia-Correa, V., Lee, S., Leclerc, K., Patel, K. S., Muinos Lopez, E., Litwa, H. P., Neibart, S. S., Kadiyala, M., Wong, M. Z., Mizrahi, M. M., Yim, N. L., Ramme, A. J., Egol, K. A., & Leucht, P. (2019). Age-related inflammation triggers skeletal stem/progenitor cell dysfunction. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 116(14), 6995–7004. doi: 10.1073/pnas.1810692116
[46] Yang, J. H., Hayano, M., Griffin, P. T., Amorim, J. A., Bonkowski, M. S., Apostolides, J. K., Salfati, E. L., Blanchette, M., Munding, E. M., Bhakta, M., Chew, Y. C., Guo, W., Yang, X., Maybury-Lewis, S., Tian, X., Ross, J. M., Coppotelli, G., Meer, M. V., Rogers-Hammond, R., Vera, D. L., … Sinclair, D. A. (2023). Loss of epigenetic information as a cause of mammalian aging. Cell, 186(2), 305–326.e27. doi: 10.1016/j.cell.2022.12.027
[47] Sarkar, T. J., Quarta, M., Mukherjee, S., Colville, A., Paine, P., Doan, L., Tran, C. M., Chu, C. R., Horvath, S., Qi, L. S., Bhutani, N., Rando, T. A., & Sebastiano, V. (2020). Transient non-integrative expression of nuclear reprogramming factors promotes multifaceted amelioration of aging in human cells. Nature communications, 11(1), 1545. doi: 10.1038/s41467-020-15174-3
[48] Gill, D., Parry, A., Santos, F., Okkenhaug, H., Todd, C. D., Hernando-Herraez, I., Stubbs, T. M., Milagre, I., & Reik, W. (2022). Multi-omic rejuvenation of human cells by maturation phase transient reprogramming. eLife, 11, e71624. doi: 10.7554/eLife.71624
[49] Zeng, X., Li, X., Li, X., Wei, C., Shi, C., Hu, K., Kong, D., Luo, Q., Xu, Y., Shan, W., Zhang, M., Shi, J., Feng, J., Han, Y., Huang, H., & Qian, P. (2023). Fecal microbiota transplantation from young mice rejuvenates aged hematopoietic stem cells by suppressing inflammation. Blood, 141(14), 1691–1707. doi: 10.1182/blood.2022017514
[50] Shemtov, S. J., Emani, R., Bielska, O., Covarrubias, A. J., Verdin, E., Andersen, J. K., & Winer, D. A. (2022). The intestinal immune system and gut barrier function in obesity and ageing. The FEBS journal, 10.1111/febs.16558. Advance online publication. doi: 10.1111/febs.16558
[51] Galkin, F., Mamoshina, P., Aliper, A., Putin, E., Moskalev, V., Gladyshev, V. N., & Zhavoronkov, A. (2020). Human Gut Microbiome Aging Clock Based on Taxonomic Profiling and Deep Learning. iScience, 23(6), 101199. doi: 10.1016/j.isci.2020.101199
[52] Molinero, N., Antón-Fernández, A., Hernández, F., ávila, J., Bartolomé, B., & Moreno-Arribas, M. V. (2023). Gut Microbiota, an Additional Hallmark of Human Aging and Neurodegeneration. Neuroscience, 518, 141–161. doi: 10.1016/j.neuroscience.2023.02.014
[53] Segain, J. P., Raingeard de la Blétière, D., Bourreille, A., Leray, V., Gervois, N., Rosales, C., Ferrier, L., Bonnet, C., Blottière, H. M., & Galmiche, J. P. (2000). Butyrate inhibits inflammatory responses through NFkappaB inhibition: implications for Crohn's disease. Gut, 47(3), 397–403. doi: 10.1136/gut.47.3.397
[54] Zhou, L., Zhang, M., Wang, Y., Dorfman, R. G., Liu, H., Yu, T., Chen, X., Tang, D., Xu, L., Yin, Y., Pan, Y., Zhou, Q., Zhou, Y., & Yu, C. (2018). Faecalibacteriumprausnitzii Produces Butyrate to Maintain Th17/Treg Balance and to Ameliorate Colorectal Colitis by Inhibiting Histone Deacetylase 1. Inflammatory bowel diseases, 24(9), 1926–1940. doi: 10.1093/ibd/izy182
[55]Xu, Q., Fu, Q., Li, Z., Liu, H., Wang, Y., & Lin, X. et al. (2021). The flavonoid procyanidin C1 has senotherapeutic activity and increases lifespan in mice. Nature Metabolism, 3(12), 1706-1726. doi: 10.1038/s42255-021-00491-8