哺乳動(dòng)物細(xì)胞展示技術(shù)——單抗藥物研發(fā)的春天
1975年英國(guó)科學(xué)家Milstein和Kohler發(fā)明的雜交瘤技術(shù)將單克隆抗體正式帶入人們視野。從1986年FDA批準(zhǔn)了第一個(gè)用于治療的單克隆抗體到如今,經(jīng)過(guò)30多年的積累,單克隆抗體的研發(fā)已經(jīng)進(jìn)入了黃金時(shí)期。僅2017年一年,F(xiàn)DA和EMA批準(zhǔn)的單克隆抗體藥物就多達(dá)10個(gè),為歷年最高,而全球累積獲批單抗類(lèi)藥物也已達(dá)到了73個(gè)。
單抗藥物的研發(fā)技術(shù)和平臺(tái)正日漸成熟,其中通過(guò)重組抗體的方式在體外進(jìn)行抗體文庫(kù)的構(gòu)建及篩選已成為單抗藥物研發(fā)的重要手段。由重組抗體技術(shù)分離產(chǎn)生抗體原理上模擬了體內(nèi)抗體產(chǎn)生的過(guò)程:通過(guò)克隆多樣化的抗體基因,基于不同的展示技術(shù),體外表達(dá)抗體基因,將其基因型與表現(xiàn)型偶聯(lián),構(gòu)建出具有多樣性的抗體文庫(kù),再施加選擇壓力篩選出與靶蛋白特異性結(jié)合的單克隆抗體。
在重組抗體的應(yīng)用中,常見(jiàn)的展示技術(shù)包括噬菌體展示技術(shù)、核糖體/mRNA展示技術(shù)、酵母表面展示技術(shù)、桿狀病毒表面展示技術(shù)等等,其中大部分的展示技術(shù)都是基于原核表達(dá)系統(tǒng),而這些技術(shù)大多只能展示小分子片段抗體,如抗原結(jié)合片段(Fab),單鏈可變區(qū)抗體片段(scFv)等,無(wú)法展示并篩選全長(zhǎng)抗體,且在原核表達(dá)系統(tǒng)中,表達(dá)蛋白過(guò)程中選擇的密碼子與真核細(xì)胞不同,故用原核表達(dá)系統(tǒng)篩選獲得的全長(zhǎng)抗體可能無(wú)法在體內(nèi)獲得高表達(dá)。而利用哺乳動(dòng)物表面展示技術(shù),可有效的解決在原核表達(dá)系統(tǒng)中出現(xiàn)的問(wèn)題。

哺乳動(dòng)物表面展示技術(shù)的優(yōu)勢(shì)
這種技術(shù)不僅能夠展示全長(zhǎng)抗體,還能夠利用真核表達(dá)系統(tǒng)指導(dǎo)蛋白質(zhì)的正確折疊,提供復(fù)雜的N型糖基化和準(zhǔn)確的O型糖基化等多種翻譯后加工功能,因而展示的抗體在分子結(jié)構(gòu)、理化特性和生物學(xué)功能方面最接近于天然的高等生物蛋白質(zhì)分子,并在哺乳細(xì)胞中穩(wěn)定且高水平的表達(dá)分泌。因此哺乳細(xì)胞展示技術(shù)具有其他技術(shù)沒(méi)有的潛在優(yōu)勢(shì)。
拿最常見(jiàn)的噬菌體展示技術(shù)與之比較,如圖所示:

? ? ? ?同噬菌體展示技術(shù)一樣,哺乳動(dòng)物細(xì)胞表面展示技術(shù)也主要包括兩個(gè)部分:一,構(gòu)建哺乳細(xì)胞表面展示的抗體庫(kù);二,與靶標(biāo)特異性結(jié)合抗體的富集及篩選。
接下來(lái)是對(duì)這兩大關(guān)鍵步驟的詳細(xì)解讀,
如果此時(shí)你正好需要,請(qǐng)繼續(xù);
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一、構(gòu)建哺乳細(xì)胞表面展示抗體庫(kù)
構(gòu)建哺乳細(xì)胞表面展示庫(kù)有兩種方法將重組DNA序列轉(zhuǎn)入哺乳動(dòng)物細(xì)胞中,一種是利用質(zhì)粒轉(zhuǎn)染,另一種是利用病毒感染宿主菌,包括牛痘病毒,慢病毒等。
1通過(guò)質(zhì)粒介導(dǎo)的文庫(kù)構(gòu)建
???? 目前invitrogen 推出了一款商業(yè)化的哺乳細(xì)胞展示質(zhì)粒載體:pDisplay

為了在細(xì)胞表面展示抗體,該質(zhì)粒將外源抗體DNA融合到了人類(lèi)血小板生長(zhǎng)因子受體(PDGFR)的跨膜區(qū)域。該載體上還包括了胞病毒啟動(dòng)子、小鼠Ig的信號(hào)肽、抗性篩選基因和c-myc標(biāo)簽。其中我們利用scFv羧基末端的c-myc標(biāo)簽來(lái)測(cè)量抗體的表達(dá)水平。人們可將外源基因克隆至載體的多克隆位點(diǎn),再把質(zhì)粒轉(zhuǎn)染至哺乳細(xì)胞中進(jìn)行抗體表達(dá)。

pDisplay載體主要功能如圖下所示:

2通過(guò)病毒介導(dǎo)的文庫(kù)構(gòu)建
??? 以慢病毒為例,如下圖:

一般來(lái)說(shuō),慢病毒介導(dǎo)的外源DNA表達(dá)需要三種質(zhì)粒:表達(dá)載體,包裝載體和pVSV-G質(zhì)粒。其中pVSV-G在胞病毒啟動(dòng)子的控制下表達(dá)VSV-G蛋白(水溶性口炎病毒),VSV-G可以與細(xì)胞膜磷脂成分相互作用,促進(jìn)病毒和細(xì)胞膜的融合。VSV-G不需要細(xì)胞表面受體,可以替代病毒包膜蛋白。為產(chǎn)生高滴度的病毒顆粒,需要利用表達(dá)載體和包裝質(zhì)粒同時(shí)共轉(zhuǎn)染細(xì)胞,在細(xì)胞中進(jìn)行病毒的包裝,包裝好的假病毒顆粒分泌到細(xì)胞外的培養(yǎng)基中,離心取得上清液后,可以直接用于宿主細(xì)胞的感染,目的基因進(jìn)入到宿主細(xì)胞之后,經(jīng)過(guò)反轉(zhuǎn)錄,整合到基因組,從而高水平的表達(dá)效應(yīng)分子。
二:與靶標(biāo)特異性結(jié)合抗體的富集及篩選
不同于噬菌體展示,哺乳細(xì)胞表面展示利用細(xì)胞分選和細(xì)胞擴(kuò)增來(lái)使目的抗體得到富集,然后利用FACs技術(shù)完成特異性抗體的篩選。
A細(xì)胞分選
? 除了常規(guī)的流式細(xì)胞分選(FACs)外,免疫磁珠分離技術(shù)(MACs)也被用于帶有目的抗體的哺乳細(xì)胞的分選富集。其策略如圖所示:

免疫磁珠法分離細(xì)胞基于細(xì)胞表面抗原能與連接在磁珠上的特異性單抗相結(jié)合,在外磁場(chǎng)中,通過(guò)抗體與磁珠相連的細(xì)胞被吸附而滯留在磁場(chǎng)中,無(wú)該種表面抗原的細(xì)胞由于不能與相連著磁珠的特異性單抗結(jié)合而沒(méi)有磁性,不在磁場(chǎng)中停留,從而使細(xì)胞得以分離。免疫磁珠法分正選法和負(fù)選法,也稱(chēng)陽(yáng)性分選法和陰性分選法。正選法-磁珠結(jié)合的細(xì)胞就是所要分離獲得的細(xì)胞;負(fù)選法-磁珠結(jié)合的細(xì)胞為不需要細(xì)胞。一般負(fù)選法分選較為常見(jiàn),因?yàn)榇朔椒ǐ@得的所需要的細(xì)胞表面不含有抗體及磁珠的干擾。
B目的抗體的富集及篩選

?帶有目的抗體的哺乳細(xì)胞經(jīng)過(guò)多輪分選,擴(kuò)增后獲得了大量的富集。通過(guò)介導(dǎo)的質(zhì)?;蛘卟《绢w粒將富集的目的抗體DNA轉(zhuǎn)入表達(dá)抗體的哺乳細(xì)胞當(dāng)中,稀釋獲得單細(xì)胞,經(jīng)過(guò)培養(yǎng),表達(dá)展示所得的單克隆抗體,再通過(guò)流式細(xì)胞檢測(cè),篩選得到與靶標(biāo)蛋白特異性結(jié)合的單克隆目的抗體。
哺乳細(xì)胞展示技術(shù)雖然具有很多優(yōu)勢(shì)和開(kāi)發(fā)潛力,但仍有不少問(wèn)題有待解決。大部分哺乳細(xì)胞展示抗體庫(kù)的庫(kù)容多樣性只有10^6-10^8,遠(yuǎn)低于噬菌體展示抗體庫(kù)可達(dá)到的10^10-10^11,且操作難度較大,周期較長(zhǎng),成本也相對(duì)較高。在進(jìn)行質(zhì)粒轉(zhuǎn)染或者病毒侵染的過(guò)程中,也較難保證只有一種外源DNA進(jìn)入單個(gè)細(xì)胞,可能會(huì)對(duì)后期抗體篩選產(chǎn)生一定的干擾。但不管如何,哺乳細(xì)胞表面展示技術(shù)仍然是單克隆抗體篩選的一個(gè)重要手段。
參考文獻(xiàn):
1.Mitchell Ho et al, Mammalian Cell Display for Antibody Engineering. Therapeutic Antibodies: Methods and Protocols,2009, vol. 525, Chapter 18.
2.Ernest S. Smith et al, Antibody Library Display on a Mammalian Virus Vector: Combining the Advantages of Both Phage and Yeast Display into One Technology, Current Drug Discovery Technologies, 2014, 11, 48-55.
3.Roger R. Beerli et al, Isolation of human monoclonal antibodies by mammalian cell display, PNAS, September 23, 2008, 14336 –14341
4. Anatoli Giritch et al, Rapid high-yield expression of full-size IgG antibodies in plants coinfected with noncompeting viral vectors, PNAS,October 3, 2006,vol. 103 no. 40:14701–14706
5. Kosuke Tomimatsu et al, A rapid screening and production method using a novel mammalian cell display to isolate human monoclonal antibodies, Biochemical and Biophysical Research Communications ,441 (2013) 59–64
6. David J. King et al, Mammalian Cell Display and Somatic Hypermutation In Vitro for Human Antibody Discovery, Current Drug Discovery Technologies, 2014, Vol. 11, No. 1
7. Yoshiko Akamatsu et al, Whole IgG surface display on mammalian cells: Application to isolation of neutralizing chicken monoclonal anti-IL-12 antibodies,Journal of Immunological Methods 327 (2007) 40–52
8. Peter M. Bowers et al, Mammalian cell display for the discovery and optimization of antibody therapeutics, Methods ,65 (2014) 44–56
9. pDisplay? Vector for expression of proteins on the surface of mammalian cells,Catalog no. V660-20
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