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B細胞受體(BCR)測序--艾柏森生物

2023-07-06 14:12 作者:艾柏森生物  | 我要投稿

B細胞受體(BCR)是B細胞表面上的跨膜蛋白,由形成I型跨膜受體蛋白的免疫球蛋白分子組成,通常位于這些淋巴細胞的外表面。BCR通過生化信號傳導和從免疫突觸中物理獲取抗原,從而控制B細胞的活化。B細胞能夠通過BCR識別、結合和內吞抗原,并最終進行抗原遞呈。成熟的BCR是一個由重鏈和輕鏈組成的四聚體,人類基因組中有7種BCR基因:

  • 重鏈BCR包括IgA、IgD、IgE、IgM和IgG,由可變區(qū)(V)、多變區(qū)(D)、連接區(qū)(J)和恒定區(qū)(C)四部分基因片段組成(VDJC);

  • 輕鏈BCR包括IgK和IgL,缺少多變區(qū)D,由三個基因片段組成(VJC);

重鏈和輕鏈相互搭配,兩條相同重鏈BCR和兩條相同輕鏈BCR形成異源四聚體,組成完整的BCR。

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BCR基因是人類基因組中復雜度很高的基因,也是變異程度很高的基因。人大概有1~2x1011種表達不同的BCR。這個復雜度主要源自3個因素:

  • 組成的多樣性:成熟BCR的VDJC/VJC結構,是通過復雜的重組生成的。BCR的重鏈有65~100種V基因片段、2種D基因片段和6種J基因片段,BCR重組時需要從上述三種片段中各選一個,這賦予了BCR高度的多樣性;

  • 連接的機動性:在重排的過程中,在V-D及D-J的連接區(qū)經常有非模板的核苷酸的隨機插入或刪除,進一步增加了CDR3區(qū)的多樣性;

  • 體細胞突變:在BCR各基因片段重排完成之后,其V區(qū)基因也可發(fā)生突變,而且突變頻率較高。

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? ? ? ? BCR-seq常用于檢測各種免疫相關疾病,遺傳性突變引起的BCR基因重排、豐度變化,用于解釋體液免疫應答機制。BCR測序的應用方向包括:

  • 原發(fā)性免疫缺陷病人體細胞突變篩查;

  • 自身免疫?。⊿LE,多發(fā)性硬化,I型糖尿病)治療指導及其過程中病程監(jiān)測;

  • 感染性疾病,惡性腫瘤藥物治療效果和耐受性評估;

  • 移植排斥(transplant tolerance)反應中耐受,排斥反應的預測和干預指導;

  • 抗體篩選

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BCR-seq

BCR-seq是為檢測BCR多樣性發(fā)展出來的測序技術,和TCR-seq一樣,目前有兩大主流技術:多重PCR和5' RACE。兩種技術的原理如下圖所示,技術優(yōu)劣勢如下表所示:

? ? ? ? 上述兩種技術都有兩個共同的問題:PCR重復引入的定量準確性問題和PCR/測序擴增引入的假陽性BCR問題。

  • 不同BCR之間擴增效率無法一致,因此不同BCR擴增時會不同程度的引入重復BCR分子,給定量帶來問題;

  • BCR復雜度高,不同BCR之間可能只有少數堿基差異;PCR/測序過程中引入堿基錯誤,在沒有糾錯機制的情況下,會被當成新的BCR處理,造成假陽性;

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測序方案

? ? ? ? 為解決上述BCR-seq中的技術問題,艾柏森開發(fā)出“絕對定量BCR-seq”測序技術,其原理為在擴增偏好性更低的5' RACE技術基礎上,引入我公司UMI/UID數字標簽糾錯技術,其原理如下圖所示:

  • 多物種:我們可針對不同物種,開發(fā)BCR-seq檢測技術;

  • 完整BCR檢測:該技術使用5’RACE技術原理,可以獲得BCR的完整序列,全面研究CDR1/2對抗原的親和力影響;

  • PCR偏好性低:該技術使用5’RACE技術原理,相較于mPCR具有更低的偏好性;

  • 定量準確:通過引入UMI數字標簽,進一步去除PCR擴增重復和測序重復、徹底排除重復引入的定量問題,準確還原BCR克隆的豐度;

  • 無假陽性:通過引入UMI數字標簽,多序列比對校正PCR和測序錯誤,去除假陽性BCR;

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服務流程

您只需要:

  • 確定檢測的BCR鏈;

  • 提供足量的B細胞、組織或全血;

  • 我們將完成RNA提取、建庫、測序和分析的全部工作;

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實測結果

由于BCR-seq和TCR-seq為相同技術原理,此處結果為TCR-seq測試結果~~

UMI/UID去重后,TCR reads由900萬降低到200萬,去除了600萬由于PCR過度擴增引入的重復Reads;

UMI/UID糾錯后,TCR 種類由99萬降低到63萬,去除了1/3的假陽性克隆

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UMI/UID去重、糾錯前后,TCR復雜度、種類、含量的變化

UMI/UID去重、糾錯前后,對兩個重復樣本的檢測,罕見克隆鑒定靈敏度從千分之一提高到萬分之一

經測試,我們的TCR-seq檢測到的TCR含量可以在10-1?~ 10-4范圍內保持線性


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