一.細(xì)胞復(fù)蘇 1、提前準(zhǔn)備完全培養(yǎng)基并預(yù)熱至37℃（可以放至在水浴或培養(yǎng)箱中進(jìn)行預(yù)熱，需要多少預(yù)熱多少，反復(fù)預(yù)熱會(huì)導(dǎo)致培養(yǎng)基失活）；用清洗潔凈的燒杯或其他合適容器裝有適量超純水，然后放入37-38℃水浴鍋中預(yù)熱至37℃（至少需30min）；把所需耗材和其他物品放置于超凈工作臺(tái)中紫外照射滅菌； 2、提前查詢(xún)所取凍存管的存放位置，把整個(gè)存儲(chǔ)架子提起，為了降低復(fù)溫對(duì)其它細(xì)胞的影響，可把該存儲(chǔ)架子放置于裝有液氮的泡沫盒中，快速（存儲(chǔ)架離開(kāi)液氮罐的時(shí)間不要超過(guò)1分鐘，否則其余細(xì)胞容易復(fù)溫死亡，凍存管子的液氮會(huì)氣化爆炸）從液氮罐中取出凍存管并放置于裝有液氮的保溫杯中(必須用用潔凈鑷子取出凍存管，以免凍傷手)，立即把存儲(chǔ)架回液氮罐；用鑷子把剛才置于保溫杯的凍存管取出，并立即（不要耽擱）放入上述準(zhǔn)備好的水浴中（放入之前快速檢查蓋子是否擰緊，蓋子切勿沒(méi)入水中，以免進(jìn)水污染），用鑷子鑷好凍存管，快速沿著容器內(nèi)壁轉(zhuǎn)圈，細(xì)胞未凍融時(shí)（1min內(nèi)）切勿取出觀察，細(xì)胞凍融時(shí)間一般為1-2 min，如果超過(guò)2min仍未凍融，應(yīng)棄用該管細(xì)胞，凍融后立即用70%酒精消毒該凍存管，然后立即放入超凈工作臺(tái)中； 3、打開(kāi)凍存管蓋，用移液管吹打細(xì)胞3次，然后立即把細(xì)胞轉(zhuǎn)移至提前準(zhǔn)備的裝有5-10ml預(yù)熱的完全培養(yǎng)基的15ml離心管中； 4、離心，小心移除上清； 5、加入5ml預(yù)熱完全培養(yǎng)基，吹打重懸細(xì)胞，然后把細(xì)胞懸液轉(zhuǎn)移至T25培養(yǎng)瓶中，并放入二氧化碳培養(yǎng)箱（5% CO2, 37℃）中培養(yǎng)； 6、第二天觀察細(xì)胞的貼壁情況，并進(jìn)行換液。 注意事項(xiàng) 細(xì)胞復(fù)蘇操作要求快速，否則細(xì)胞容易在凍融過(guò)程中產(chǎn)生冰晶，從而導(dǎo)致細(xì)胞死亡，所以必須提前準(zhǔn)備好所需的培養(yǎng)基、培養(yǎng)耗材和其他所需物品，絕對(duì)不允許臨時(shí)準(zhǔn)備； 2.在解凍細(xì)胞前，必須把超凈工作臺(tái)準(zhǔn)備至工作狀態(tài)，提前準(zhǔn)備裝有5-10ml預(yù)熱的完全培養(yǎng)基的15ml離心管； 3.為了降低復(fù)溫對(duì)其它細(xì)胞的影響，可把該存儲(chǔ)架子放置于裝有液氮的泡沫盒中； 4.存儲(chǔ)架離開(kāi)液氮罐的時(shí)間一般不要超過(guò)1分鐘，否則其余細(xì)胞容易復(fù)溫死亡，凍存管子的液氮?dú)饣ǎ? 5.放入之前快速檢查蓋子是否擰緊，蓋子切勿沒(méi)入水中，以免進(jìn)水污染； 6.細(xì)胞未凍融時(shí)（1min內(nèi)）切勿取出觀察； 7.根據(jù)復(fù)蘇細(xì)胞的大小選擇合適的離心速度和時(shí)間，一般不超過(guò)1000RPM,10min； 8.復(fù)蘇后的第二天必須要進(jìn)行換液（加入培養(yǎng)基的量根據(jù)細(xì)胞的密度和生長(zhǎng)速度），以降低凍存保護(hù)劑DMSO的影響； 9.離心速度和時(shí)間依據(jù)具體細(xì)胞決定； 10.上述是以T25培養(yǎng)瓶為例，具體選用何種培養(yǎng)器皿取決于細(xì)胞生長(zhǎng)密度需求（啟動(dòng)正常生長(zhǎng)所需的密度）。 二.細(xì)胞換液培養(yǎng) 1、全量換液：把所有的舊培養(yǎng)液移除，加入新的培養(yǎng)液（加入培養(yǎng)基的量根據(jù)細(xì)胞的密度和生長(zhǎng)速度）； 2、半量換液：把舊培養(yǎng)液移至15ml離心管中，然后在培養(yǎng)器皿中加入適量新培養(yǎng)基（避免細(xì)胞離開(kāi)培養(yǎng)液太久），把裝有舊培養(yǎng)液的離心管進(jìn)行離心（1000RPM, 10min），離心后取適量舊培養(yǎng)上清至培養(yǎng)器皿中。 注意事項(xiàng) 1.全量換液適合于生長(zhǎng)較快的腫瘤細(xì)胞，因?yàn)檫@些細(xì)胞可在短期內(nèi)分泌足夠的因子來(lái)支撐其生長(zhǎng)； 2.半量換液主要適合于生長(zhǎng)較慢的原代細(xì)胞和干細(xì)胞，這些細(xì)胞很難在短期內(nèi)分泌足夠的因子來(lái)支撐其生長(zhǎng)，舊培養(yǎng)液中恰好含有這些因子； 3.新舊培養(yǎng)液的配比取決于細(xì)胞的密度和生長(zhǎng)速度及其自身的特性，請(qǐng)參照具體細(xì)胞的培養(yǎng)建議，一般為3:1（新：舊）； 4.如果細(xì)胞發(fā)生發(fā)生污染，切勿進(jìn)行半量換液。 三.細(xì)胞傳代培養(yǎng) 1、當(dāng)細(xì)胞密度達(dá)到其生長(zhǎng)密度極限時(shí)（一般腫瘤細(xì)胞為80-100%，原代細(xì)胞和干細(xì)胞為80-90%，有些細(xì)胞為40-50%，熟知所養(yǎng)細(xì)胞的生長(zhǎng)密度極限），移除舊培養(yǎng)液； 2、用PBS洗滌兩次（舊培養(yǎng)中的鈣離子會(huì)抑制胰酶的活性），加入1ml胰酶消化液（以T25培養(yǎng)瓶為例），立即蓋好蓋子，把培養(yǎng)瓶置于倒置顯微鏡下觀察，如大部分細(xì)胞變圓，立即移除胰酶消化液（如大部分細(xì)胞漂起，可不移除胰酶消化液），加入5ml預(yù)熱完全培養(yǎng)基，用吸管取培養(yǎng)液吹打瓶壁細(xì)胞，使其脫離瓶壁形成單細(xì)胞懸液，離心，小心移除上清； 3、加入5ml預(yù)熱完全培養(yǎng)基，吹打重懸細(xì)胞用細(xì)胞計(jì)數(shù)板在顯微鏡下計(jì)算細(xì)胞數(shù)，分裝入T25培養(yǎng)瓶中，添加基至總體積為5ml，置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)；傳代1次。 注意事項(xiàng) 1.熟知所養(yǎng)細(xì)胞的生長(zhǎng)密度極限； 2.第一次進(jìn)行所養(yǎng)細(xì)胞傳代時(shí)，消化時(shí)必須把培養(yǎng)瓶置于倒置顯微鏡下觀察，并記錄所需時(shí)間，下次按照該時(shí)間執(zhí)行即可； 3.進(jìn)行細(xì)胞傳代時(shí)必須結(jié)合考慮細(xì)胞生長(zhǎng)密度需求（啟動(dòng)正常生長(zhǎng)所需的密度）和實(shí)際的工作需求，在滿(mǎn)足細(xì)胞生長(zhǎng)密度需求的前提下，需要多少瓶就傳多少瓶，降低工作強(qiáng)度和試劑耗材消耗； 4.離心速度和時(shí)間依據(jù)具體細(xì)胞決定。 四.細(xì)胞凍存保種 1、提前配制凍存液：用血清或完全培養(yǎng)基配制5-10%DMSO（根據(jù)具體細(xì)胞決定）凍存液； 2、消化收取細(xì)胞：當(dāng)細(xì)胞密度即將達(dá)到其生長(zhǎng)密度極限時(shí)進(jìn)行換液，第二天，移除舊培養(yǎng)液，用PBS洗滌兩次（舊培養(yǎng)中的鈣離子會(huì)抑制胰酶的活性），加入1ml胰酶消化液（以T25培養(yǎng)瓶為例），立即蓋好蓋子，把培養(yǎng)瓶置于倒置顯微鏡下觀察，如大部分細(xì)胞變圓，立即移除胰酶消化液（如大部分細(xì)胞飄起，可不移除胰酶消化液），加入5ml預(yù)熱完全培養(yǎng)基，用吸管取培養(yǎng)液吹打瓶壁細(xì)胞，使其脫離瓶壁形成單細(xì)胞懸液，離心，小心移除上清； 3、加入適量（消化前預(yù)估細(xì)胞的數(shù)量，1-2*10E6/ml凍存液）凍存液并吹打混勻，分裝至凍存管中，標(biāo)記凍存細(xì)胞的名稱(chēng)、冷凍日期、操作者姓名拼音簡(jiǎn)寫(xiě)，然后放入梯度降溫盒（提前復(fù)溫至室溫），置于-80℃過(guò)夜，次晨置于液氮罐中保存。 注意事項(xiàng) 1.密切觀察細(xì)胞的生長(zhǎng)密度，當(dāng)細(xì)胞密度即將達(dá)到其生長(zhǎng)密度極限時(shí)進(jìn)行換液，以便第二天進(jìn)行保種； 2.消化前進(jìn)行凍存液配制，切勿用培養(yǎng)基和血清重懸細(xì)胞后再加入DMSO，這樣會(huì)導(dǎo)致局部高濃度的DMSO對(duì)細(xì)胞產(chǎn)生損傷； 3.消化前預(yù)估細(xì)胞的數(shù)量，加入適量?jī)龃嬉?，以使?xì)胞密度為1-2*10E6/ml，密度過(guò)高會(huì)導(dǎo)致凍存保護(hù)液不足，密度過(guò)低會(huì)導(dǎo)致凍存液對(duì)細(xì)胞有毒性； 4.梯度降溫盒必須提前復(fù)溫至室溫，切勿從-80℃取出即可使用，這樣會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞全部死亡； 5.離心速度和時(shí)間依據(jù)具體細(xì)胞決定。 問(wèn)答環(huán)節(jié) 問(wèn) 細(xì)胞體內(nèi)外培養(yǎng)的差別是什么？ 答：細(xì)胞離體后，失去了神經(jīng)體液的調(diào)節(jié)和細(xì)胞間的相互影響，生活在缺乏動(dòng)態(tài)平衡相對(duì)穩(wěn)定環(huán)境中，日久天長(zhǎng)，易發(fā)生如下變化：分化現(xiàn)象減弱；形態(tài)功能趨于單一化或生存一定時(shí)間后衰退死亡；或發(fā)生轉(zhuǎn)化獲得不死性，變成可無(wú)限生長(zhǎng)的連續(xù)細(xì)胞系或惡性細(xì)胞系。因此，培養(yǎng)中的細(xì)胞可視為一種在特定的條件下的細(xì)胞群體，它們既保持著與體內(nèi)細(xì)胞相同的基本結(jié)構(gòu)和功能，也有一些不同于體內(nèi)細(xì)胞的性狀。實(shí)際上從細(xì)胞一旦被置于體外培養(yǎng)后，這種差異就開(kāi)始發(fā)生了。 問(wèn) 什么是無(wú)血清培養(yǎng)基？與普通培養(yǎng)基有什么區(qū)別？ 答：無(wú)血清培養(yǎng)基(serum free medium,SFM):是不需要添加血清就可以維持細(xì)胞在體外較長(zhǎng)時(shí)間生長(zhǎng)繁殖的合成培養(yǎng)基。但是它們可能包含個(gè)別蛋白或大量蛋白組分?；境煞譃榛A(chǔ)培養(yǎng)基及添加組分兩大部分。添加組分可能包括纖連蛋白、層粘連蛋白等貼壁因子、胰島素、轉(zhuǎn)鐵蛋白、硒等。 問(wèn) 細(xì)胞培養(yǎng)基偶然被凍，可否繼續(xù)使用？ 答：如果細(xì)胞培養(yǎng)基偶然被凍，您應(yīng)該自然溶解培養(yǎng)基并觀察是否有沉淀產(chǎn)生。如果沒(méi)有沉淀產(chǎn)生，培養(yǎng)基可以正常使用，如果出現(xiàn)沉淀，只能丟棄這些培養(yǎng)基。 問(wèn) 培養(yǎng)基及其它添加物和試劑可反復(fù)凍融嗎？ 答：大部分添加物和試劑最多可以?xún)鋈?次，如果次數(shù)過(guò)多會(huì)將使含有的蛋發(fā)生降解和沉淀，這將會(huì)影響它的性能。 問(wèn) 液體培養(yǎng)基的保存是冷藏好？還是冷凍好？ 答：要冷藏??！通常液體培養(yǎng)基在冷藏條件下可存放6個(gè)月到一年。 問(wèn) 低血清培養(yǎng)基能用肉眼判斷其pH值嗎？ 答：低血清培養(yǎng)基中酚紅的含量與普通培養(yǎng)基中的酚紅含量不同，不能通過(guò)肉眼觀察或通過(guò)經(jīng)驗(yàn)來(lái)判定pH值，建議使用pH計(jì)進(jìn)行測(cè)定。