一、藥理常用實(shí)驗(yàn)動(dòng)物及選擇

1. 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物（experimental animal）

實(shí)驗(yàn)動(dòng)物是生命科學(xué)研究最重要的和不可替代的實(shí)驗(yàn)材料。實(shí)驗(yàn)動(dòng)物和動(dòng)物實(shí)驗(yàn)是研究包括人類(lèi)在內(nèi)的生命活動(dòng)及其疾病防治規(guī)律的基本手段。

（一）實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的種類(lèi)

蟾蜍

蟾蜍常用于神經(jīng)生理、肌肉生理、心臟生理，微循環(huán)、水腫等實(shí)驗(yàn)。

小鼠（Mouse)

小鼠被廣泛的用于生物學(xué)、醫(yī)學(xué)、獸醫(yī)學(xué)、生理學(xué)、遺傳學(xué)、藥理、毒理、腫瘤、放射性、食品、生物制品等的科研、生產(chǎn)和教學(xué)。

大鼠（rat)

大鼠應(yīng)用于生理學(xué)、藥理學(xué)、免疫學(xué)，內(nèi)分泌學(xué)、神經(jīng)生理、營(yíng)養(yǎng)學(xué)、傳染病、腫瘤和肝外科等的研究。

豚鼠（Guinea pig )

常用于免疫學(xué)、微生物學(xué)、傳染病學(xué)、聽(tīng)覺(jué)生理、實(shí)驗(yàn)性壞血癥等研究。

家兔(Rabbit )

常用于免疫學(xué)、腫瘤、實(shí)驗(yàn)生理學(xué)、生殖生理、遺傳性疾病等的方面的研究，制造生物制品。

貓的神經(jīng)系統(tǒng)和循環(huán)系統(tǒng)較發(fā)達(dá)，與人很相似。常用于神經(jīng)、循環(huán)和呼吸方面的實(shí)驗(yàn)。

狗常用于基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)、藥理、毒理學(xué)、實(shí)驗(yàn)外科學(xué)、行為學(xué)、腫瘤學(xué)等方面研究

豬常應(yīng)用于皮膚燒傷、腫瘤學(xué)、免疫學(xué)、心血管及糖尿病、遺傳性和營(yíng)養(yǎng)性疾病、移植、外科手術(shù)等方面的研究。

猴子

猴子主要用于傳染病學(xué)、藥理學(xué)和毒理學(xué)、生殖生理、口腔醫(yī)學(xué)）營(yíng)養(yǎng)、代謝、行為學(xué)和高級(jí)神經(jīng)活動(dòng)研究及老年病、器官移植、眼科、內(nèi)分泌病和畸胎學(xué)、腫瘤學(xué)。

二、實(shí)驗(yàn)動(dòng)物編號(hào)標(biāo)記方法

動(dòng)物在實(shí)驗(yàn)前常常需要作適當(dāng)?shù)姆纸M，那么就要將其標(biāo)記使各組加以區(qū)別。標(biāo)記的方法很多，良好的標(biāo)記方法應(yīng)滿足標(biāo)號(hào)清晰、耐久、簡(jiǎn)便、適用的要求。

　常用的標(biāo)記法有染色、耳緣剪孔、烙印、號(hào)牌等方法。

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這種標(biāo)記方法在實(shí)驗(yàn)室最常使用，也很方便。使用的顏料一般有3-5%苦味酸溶（黃），2%硝酸銀（咖啡色）溶液和0.5%中性品紅（紅色）等。標(biāo)記時(shí)用毛筆或棉簽蘸取上述溶液，在動(dòng)物體的不同部位涂上斑點(diǎn)，以示不同號(hào)碼。編號(hào)的原則是：先左后右，從上到下。一般把涂在左前腿上的計(jì)為1號(hào)，左側(cè)腹部計(jì)為2號(hào)，左后腿為3號(hào)，頭頂部計(jì)為4號(hào)，腰背部為5號(hào)，尾基部為6號(hào)，右前腿為7號(hào)，右側(cè)腰部為8號(hào)，右后腿計(jì)為9號(hào)。若動(dòng)物編號(hào)超過(guò)10或更大數(shù)字時(shí)，可使用上述兩種不同顏色的溶液，即把一種顏色作為個(gè)倍數(shù)，另一種顏色作為十位數(shù)，這種交互使用可編到99號(hào)，假使把紅的記為十位數(shù)，黃色記為個(gè)位數(shù)，那么右后腿黃斑，頭頂紅斑，則表示是49號(hào)鼠，其余類(lèi)推。

（二）烙印法

　　用刺數(shù)鉗在動(dòng)物耳上刺上號(hào)碼，然后用棉簽蘸著溶在酒精中的黑墨在刺號(hào)上加以涂抹，烙印前最好對(duì)烙印部位預(yù)先用酒精消毒。

　?。ㄈ┨?hào)牌法

　　用金屬制的牌號(hào)固定于實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的耳上，大動(dòng)物可系于頸上。

　　對(duì)猴、狗、貓等大動(dòng)物有時(shí)可不做特別標(biāo)記，只記錄它們的外表和毛色即可。

三、常用實(shí)驗(yàn)動(dòng)物捉拿及固定方法

蟾蜍

小鼠

右手抓住小白鼠的尾巴將鼠提起，放置于鼠籠邊緣或其他易于攀抓處，輕輕向后拉鼠尾。趁其不備，用左手拇指和示指(食指)捏住其兩耳及頭部皮膚，使腹部朝上，屈曲左手中指使鼠背在上面，然后以環(huán)指(無(wú)名指)及小指壓住鼠尾，使小白鼠完全固定。

大鼠、豚鼠、家兔

大鼠：以左手或持夾子抓住鼠尾，左手戴防護(hù)手套或用厚布蓋住鼠身作防護(hù)，握住其整個(gè)身體，并固定其頭骨，防止被咬傷，注意不要握力過(guò)大，勿捏其頸部以免窒息致死，根據(jù)實(shí)驗(yàn)需要可指定于大鼠固定籠內(nèi)或用繩綁其四肢，固定于大鼠手術(shù)臺(tái)上。

豚鼠：以右手抓住豚鼠頭頸部，將其兩前肢挾在豚鼠頭與右手拇指和食指之間，整個(gè)抓住頸胸部（不要抓得太緊以免窒息），左手抓住兩后肢，使腹部向上，而后進(jìn)行操作。

家兔：用一手抓住家兔頸背部皮膚，將兔提起，以另一手托住其臀部，使兔呈坐位姿勢(shì)。固定：將兔作仰臥位，一手仍抓住頸部皮膚，另一手順其腹部撫摸至膝關(guān)節(jié)，壓住關(guān)節(jié)。另一人用繩帶捆綁四肢，使兔腹部向上，固定在兔手術(shù)臺(tái)上。頭部則用兔頭固定夾固定。?

四、常用實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的性別辨認(rèn)

1、大白鼠和小白鼠

兩性的區(qū)別要點(diǎn)有三：①雄性可見(jiàn)陰囊，站位時(shí)陰囊內(nèi)睪丸下垂，熱天更為明顯；②雄鼠的尿道口與肛門(mén)距離較遠(yuǎn)，兩者間有毛，雌鼠的陰道口與肛門(mén)比較靠近，界線不清，兩者間無(wú)毛相連；③成熟雌鼠的腹部可見(jiàn)乳頭。豚鼠的性別辨認(rèn)與大鼠基本相似。

2、家兔

? 雄兔可見(jiàn)陰囊，兩側(cè)各有一個(gè)睪丸；用拇指和食指按壓生殖器部位，雄兔可露出陰莖；雌兔的腹部可見(jiàn)5對(duì)乳頭。

3、狗和貓等大動(dòng)物外生殖器官發(fā)育顯著，性別容易辨認(rèn)。

五、常用實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的給藥途徑和方法

?給藥是藥理實(shí)驗(yàn)的基本操作技術(shù)，必須熟練掌握。給藥方式：

（1）體外給藥：在離體實(shí)驗(yàn)中，將藥品直接準(zhǔn)確地加入試管或離體器官浴槽中。

（2）體內(nèi)給藥：長(zhǎng)用的給藥途徑包括：灌胃（ig）、靜脈注射（iv）、肌肉注射（im）、皮下注射（sc）、腹腔注射（ip）及靜脈滴注（ivgtt）。

注射器的使用：注射器有50ml、30ml、20ml、10ml、5ml、2ml、1ml、0.25ml等規(guī)格，注射用針頭有7號(hào)、6號(hào)、5號(hào)及4號(hào)等規(guī)格，實(shí)驗(yàn)時(shí)應(yīng)選擇合適的規(guī)格。

安裝針頭前應(yīng)檢查注射器是否損壞或抽動(dòng)困難，針頭是否有尖或尖彎，安裝針頭要緊密，以免脫落或進(jìn)氣。針頭斜面要與注射器刻度在同一平面，以便于使用。

1、小鼠給藥方法

（1）灌胃（ig）：將小鼠固定后，右手持裝有灌胃器的注射器，自口角外插入口腔，沿上顎插入食道。如遇阻力，可將注射器拔出再插，以免穿破食道或誤入氣管，造成動(dòng)物死亡。灌胃容量一般為0.1～0.2ml/10g，不超過(guò)0.5ml/只。

（2）皮下注射（sc）：兩人合作，一人一手抓住小白鼠頭部皮膚，另一手抓住鼠尾。另一人注射藥物。注射部位在背部皮下組織。如一人操作時(shí)，左手抓鼠尾，讓鼠爬在鐵絲籠上，右手將抽好藥液的注射器針頭插入背部皮下組織。如一人操作時(shí)，左手抓鼠尾，讓鼠爬在鐵絲籠上，右手將抽好的藥液的注射器針頭插入背部皮下將藥注入。注射量不超過(guò)0.5ml/只。

（3）肌肉注射（im）：因小鼠肌肉少，很少作肌肉注射給藥，必要時(shí)可注射于股部肌肉或后腿肌肉。0.02～0.05ml/10g（每腿），小鼠一側(cè)給藥量不超過(guò)0.1ml?？捎蓛扇撕献鳌Ｒ蝗俗笫肿プ⌒∈蟮念^部皮膚，右手拉住鼠尾。另一人持注射器（選用4或5號(hào)針頭），將針刺入后肢外側(cè)肌肉。如一人單獨(dú)操作，以左手拇指和食指抓住小鼠頭部，小指、無(wú)名指和掌部抓住小鼠尾及一側(cè)后肢，右手持注射器刺入后肢肌肉給藥。

（4）腹腔注射（ip）：左手持鼠，右手持注射器從下腹左或右側(cè)（避開(kāi)膀胱）朝頭部方向刺入，宜先刺入皮下，經(jīng)2～3mm再刺入腹腔，此時(shí)針頭與腹壁的角度約45度。針尖插入不宜太深或太近上腹部，避免刺破內(nèi)臟，注射量一般為0.1～0.25ml/只。?

（5）尾靜脈注射（iv）：將小鼠置于固定器內(nèi)，使其尾巴露出，用70%酒精擦尾部，或?qū)⑹笪步?0℃熱水中。待尾部靜脈擴(kuò)張后，左手拉尾，右手進(jìn)針。注射容量不超過(guò)0.5ml/只。?

2、大鼠給藥方法

大白鼠灌胃、腹腔注射、靜脈注射均可一人操作，基本方法與小鼠相似。灌胃：1～2ml/100g；皮下注射：0.2ml/100g，最大劑量1ml/只；肌肉注射：一般每側(cè)0.15ml，最大劑量0.4ml/只；尾靜脈注射：0.5～1ml/100g，最大劑量4ml/只。還可將大鼠腹股溝切開(kāi)，從股靜脈注射藥物，也可從外頸靜脈插管給藥（麻醉后）。

3、家兔給藥方法

（1）灌胃：兩人合作，一人固定兔身(或用固定器將兔固定)，另一人用兔開(kāi)口器將兔口張開(kāi)，并把兔舌壓在開(kāi)口器的下邊，取合適的導(dǎo)尿管涂以水或液體石蠟，從開(kāi)口器中央孔插入，沿上腭后壁慢慢送人食管約15 cm左右即可進(jìn)入胃中。此時(shí)，將導(dǎo)尿管的一端放入水內(nèi)，如水中不見(jiàn)氣泡出現(xiàn)，兔亦不發(fā)生呼吸困難和掙扎，則說(shuō)明導(dǎo)管已插入胃中，否則說(shuō)明導(dǎo)尿管誤人氣管，應(yīng)立即抽出重插。待確定導(dǎo)尿管已在胃內(nèi)，可接上注射器，將藥液慢慢推人，并再推人少量空氣，使管內(nèi)藥液完全’進(jìn)入胃中，然后將導(dǎo)尿管抽出。灌胃量一般為10ml/kg，不超過(guò)20 mL／kg(體重)。

（2）耳靜脈注射：兩人合作，一人固定兔身及兔頭，一人將兔耳后緣之毛拔去，顯露耳緣靜脈，用手指輕彈耳殼，使血管擴(kuò)張。助手左手指壓住耳緣靜脈根部，待血管明顯充血后，將抽好藥液的注射器從靜脈近耳尖處插入血管。針頭刺入血管以后，以左手拇指和食指將針頭與兔耳固定，不讓針頭滑動(dòng)。放開(kāi)耳根靜脈手指壓力，即可注放藥液，若針頭確實(shí)在血管內(nèi)，則推藥通暢無(wú)阻力，并見(jiàn)血液被藥液沖走，如沆入皮下則耳殼腫脹、推注不順，需拔出重新注射。注射守畢，用手指按在針眼上，然后將針尖抽出，并繼續(xù)用手指或加棉球輕輕按壓2—3分鐘，以防出血，注射量0.5～2.5ml/kg。

（3）皮下注射、肌內(nèi)注射、腹腔注射? 部位同小白鼠。注射量：皮下或肌內(nèi)注射0.5～l mL／kg(體重)；腹腔注射1～10 mL／kg(體重)。

4、豚鼠給藥方法

豚鼠腹腔注射可二人操作，一人固定，將動(dòng)物置于仰臥位，另一人注射。雄性豚鼠可作陽(yáng)莖背靜脈注射給藥。

5、狗給藥方法

靜脈注射法：常用的注射部位是后肢小隱靜脈，該血管從后肢外踝后側(cè)走向外上側(cè)，也可用前肢靜脈，在腳爪上方背側(cè)正前位，靜注時(shí)先局部剪毛，一人用手抓緊腿使血液回流受阻，此時(shí)可看出血管走向。另一人隨即將藥液注入靜脈。

六、常用實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的麻醉方法

在慢性實(shí)驗(yàn)或急性在體實(shí)驗(yàn)中，施行手術(shù)之前必須將動(dòng)物麻醉。適宜的麻醉狀態(tài)是呼吸深慢而平穩(wěn)，角膜反射與運(yùn)動(dòng)反應(yīng)消失，肌肉松弛。

1．常用麻醉劑的種類(lèi)及用法 麻醉劑可分為局部麻醉劑和全身麻醉劑兩種。局部麻醉劑常用0.5—1.0% 鹽酸普魯卡因或2%鹽酸可卡因作皮膚或粘膜表面麻醉。在生理實(shí)驗(yàn)中，多采用全身麻醉劑，如揮發(fā)性的乙醚、氟烷和非揮發(fā)性的巴比妥類(lèi)、氨基甲酸乙酯等，以下分別加以介紹。

2．麻醉劑的給藥途徑及方法 非揮發(fā)性麻醉劑的給藥途徑為注射給藥法，主要有靜脈、腹腔、肌肉、皮下和淋巴囊注射。

（1）靜脈注射 常用靜脈注射麻醉狗、兔。在狗，最常用于注射和采血的靜脈為前肢內(nèi)側(cè)的頭靜脈和后肢小腿外側(cè)的小隱靜脈。靜脈注射兔的常用部位為耳緣靜脈。兔耳的外緣血管為靜脈，中央的血管為動(dòng)脈。注射。

（2）腹腔注射 常用腹腔注射麻醉貓和鼠類(lèi)，狗、兔、鴿、蛙類(lèi)也可采用。在進(jìn)行貓的腹腔注射時(shí)，要緊緊抓住頸后皮膚皺襞，迅速將注射針頭刺入腹腔，注射完畢后立即退出針頭。貓是易發(fā)怒動(dòng)物，牙、爪均可傷人，為安全計(jì)，最好將貓放入布制口袋內(nèi)，封口后進(jìn)行注射，其方法并不難掌握。在腹腔注射鼠類(lèi)時(shí)，也需注意安全。對(duì)小白鼠可采用手持法進(jìn)行注射，即用左手小指和第四指將鼠尾夾住，迅速用其它三指抓住鼠耳及頸部皮膚，將腹部朝上，右手將注射針頭刺入下腹部腹白線稍外側(cè)處，注射針與皮膚面呈45°夾角，若針尖通過(guò)腹肌后抵抗消失，應(yīng)保持針頭不動(dòng)，輕輕注入麻醉劑。腹腔注射應(yīng)防止把針頭刺入腸、肝、膀胱等內(nèi)臟器官，因此針頭刺入后須輕輕回抽，如無(wú)腸內(nèi)容物、尿液或血液被抽出，表明針頭未刺入內(nèi)臟。

（4）皮下注射 在注射麻醉中并不常用。小白鼠的皮下注射通常在背部皮下，可將皮膚拉起，注射針刺入皮下。將針頭輕輕向左右搖擺，容易擺動(dòng)則表明已刺入皮下，然后注射藥物。拔針時(shí)，可以手指輕捏注射部位，以防藥液外漏。對(duì)大白鼠、豚鼠、兔、貓等可選用背部、大腿內(nèi)側(cè)或臀部等皮下脂肪較少的部位進(jìn)行皮下注射。鴿通常選用翼下部位注射。

（5）淋巴囊注射 麻醉蛙或蟾蜍時(shí)常用淋巴囊注射。由于蛙類(lèi)皮膚較薄，彈性較差，抽針后藥液易自注射處外流，故采用胸部淋巴囊注射為宜。方法是將針頭刺入口腔粘膜，通過(guò)下頜肌層入皮下淋巴后囊再行注射。一只動(dòng)物一次可注射0.25—0.1ml升溶液。

七、常用實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的采血方法

由于實(shí)驗(yàn)動(dòng)物不同，實(shí)驗(yàn)需要和采血數(shù)量有別，所選用的采血方法也不相同。這里僅介紹幾種實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的常用采血技術(shù)。

1．兔和豚鼠

（1）心臟采血 將兔或豚鼠背位固定，剪去左側(cè)胸部相當(dāng)于心臟部位的被毛，用碘酒和酒精消毒皮膚，選擇心臟跳動(dòng)最明顯處作穿刺。一般由胸骨左緣外3mm處刺入兔的第三肋間隙；在豚鼠，則刺入第4-6肋間隙。穿刺時(shí)，最好用左手觸診心臟，以作配合。當(dāng)針頭接近心臟時(shí)，就會(huì)感到心臟的跳動(dòng)。這時(shí)需將針頭再向里穿刺，便可進(jìn)入心室。由于心臟的搏動(dòng)，血液會(huì)自然進(jìn)入注射器。如認(rèn)為針頭已進(jìn)入心臟，但抽不出血液，可把針頭稍微退出或進(jìn)入一點(diǎn)。心臟采血經(jīng)6-7天后，可以重復(fù)進(jìn)行。采血量：在兔一次可取血液20-25ml，在豚鼠可取6-7ml血液。

（2）兔耳中央動(dòng)脈采血 將兔置于兔固定箱內(nèi)，用酒精棉球擦揉兔耳片刻，使其充血。在兔耳中央有一條縱行、較粗、顏色鮮紅的中央動(dòng)脈。用左手固定兔耳，右手持注射器，在中央動(dòng)脈的末端，沿動(dòng)脈平行地向心方向刺入動(dòng)脈，輕輕抽動(dòng)針筒，即可見(jiàn)血液進(jìn)入注射器。一次可采血約15ml（采血后應(yīng)注意止血）。采血一般使用6號(hào)針頭，不可太細(xì)。需加注意的是，兔耳中央動(dòng)脈易發(fā)生痙攣性收縮，因此，采血前必須使兔耳充血。當(dāng)動(dòng)脈擴(kuò)張，未發(fā)生痙攣性收縮前立即進(jìn)行抽血，時(shí)間過(guò)長(zhǎng)，動(dòng)脈會(huì)發(fā)生較長(zhǎng)時(shí)間的收縮，采血難以進(jìn)行。

? ? ? ? ?此外，兔和豚鼠還可采用股靜脈、頸靜脈、股動(dòng)脈、頸總動(dòng)脈采血，一般需行動(dòng)、靜脈分離術(shù)，而后采取。

2．小白鼠和大白鼠

（1）頸靜脈或頸動(dòng)脈采血 將鼠麻醉后背位固定于手術(shù)臺(tái)上，剪去一側(cè)頸部外側(cè)的被毛，作常規(guī)頸靜脈或頸動(dòng)脈分離術(shù)。用注射器針頭沿血管平行方向刺入，抽取所需血量。此法采血量：體重20g小白鼠可采血0.6ml左右；體重300g大白鼠可采血8ml左右。同法也可選用股動(dòng)脈或股靜脈采血。

（2）尾靜脈采血 將鼠放入固定筒內(nèi)，露出鼠尾。用手揉擦或用溫水（45—50℃）加溫鼠尾，也可用二甲苯等涂擦鼠尾，使尾靜脈充血。用剪刀剪斷尾尖（小白鼠1—2mm，大白鼠約5—10mm）后，即可流出血液。如血流不暢，可用手輕輕從尾根部向尾尖部擠壓數(shù)次，可取到數(shù)滴血液。

? ? ? ? ?如實(shí)驗(yàn)需要間隔一段時(shí)間而多次采血時(shí)，每次采血可將鼠尾剪去很小一段。采血后，用棉球壓迫止血，并立即用6% 液體火棉膠涂于尾部傷口處，使之結(jié)一層火棉膠薄膜，以保護(hù)傷口。

3．狗和貓 狗、貓的采血可用前、后肢皮下靜脈。

其基本方法與靜脈注射法相同。需加注意的是抽血時(shí)速度要慢，以防針口吸著血管壁。此法一般可抽取10—20ml血液。此外，還可采用頸靜脈、頸動(dòng)脈、股動(dòng)脈取血，基本方法見(jiàn)頸部手術(shù)和股部手術(shù)。如實(shí)驗(yàn)需要抽取大量血液，可用心臟采血法，其方法與兔的心臟采血略同。

4．鴿、雞和鴨

（1）翼根靜脈采血 鴿和雞常采用翼根靜脈采血法。采血時(shí)，可將翼部展開(kāi)，露出腋窩部，將羽毛拔去，即可見(jiàn)到明顯的翼根靜脈。由助手將動(dòng)物固定，用碘酒、酒精消毒皮膚。用左手拇指、食指壓迫此靜脈的近心端，使血管怒張。右手持連有5號(hào)半針頭的注射器，由翼根部向翅方向沿靜脈平行刺入血管，即可抽取血液。

（2）翼下肱靜脈采血 鴨可從翼下肱靜脈采血。采血時(shí)，將鴨背位固定于手術(shù)臺(tái)上，剪去翼下靠軀干的羽毛，殘留的絨羽可用手拔去。在靠近軀干部的翼下可見(jiàn)到皮下有一條深藍(lán)色的肱靜脈，便可用注射器由此處采血。

八、常用實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的處死方法

當(dāng)實(shí)驗(yàn)中途停止或結(jié)束時(shí)，實(shí)驗(yàn)者應(yīng)站在實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的立場(chǎng)上以人道的原則去處置動(dòng)物，原則上不給實(shí)驗(yàn)動(dòng)物任何恐怖和痛苦，也就是要施行安樂(lè)死。安樂(lè)死是指實(shí)驗(yàn)動(dòng)物在沒(méi)有痛苦感覺(jué)的情況下死去。實(shí)驗(yàn)動(dòng)物安樂(lè)死方法的選擇取決于動(dòng)物的種類(lèi)與研究的課題。

一、蛙 類(lèi)? ? 常用金屬探針插入枕骨大孔,破壞腦脊髓的方法處死。?

二、大鼠和小鼠

? ? 1. 頸椎脫臼法：右手抓住鼠尾用力向后拉,同時(shí)左手拇指與食指用力向下按住鼠頭。將脊髓與腦髓拉斷，鼠便立即死亡。

? ? 2. 斷頭法：用剪刀在鼠頸部將鼠頭剪掉，鼠立即死亡。

?? ?3. 擊打法：右手抓住鼠尾,提起，用力摔擊其頭部，鼠痙攣后立即死去?；蛴媚惧N用力擊打鼠頭部也可致死。

? ? 4. 急性大出血法：可采用鼠眼眶動(dòng)脈和靜脈急性大量失血方法使鼠立即死亡。

? ? 5. 藥物致死法：吸入一定量的一氧化碳、乙醚、氯仿等均可使動(dòng)物致死。

三、狗、兔、豚鼠

? ? 1. 空氣栓塞法：向動(dòng)物靜脈內(nèi)注入一定量的空氣,使之發(fā)生栓塞而死。當(dāng)空氣注入靜脈后，可在右心隨著心臟的跳動(dòng)使空氣與血液成泡沫狀，隨血液循環(huán)到全身。如進(jìn)到肺動(dòng)脈，可阻塞其分支，進(jìn)入心臟冠狀動(dòng)脈，造成冠狀動(dòng)脈阻塞，發(fā)生嚴(yán)重的血液循環(huán)障礙，動(dòng)物很快致死。一般兔、貓等靜脈內(nèi)注入20～40ml空氣即可致死。每條狗由前肢或后肢皮下靜脈注入80～150ml空氣，可很快致死。

? ? 2. 急性失血法：先使動(dòng)物輕度麻醉，如狗可按每公斤體重靜脈注射硫噴妥鈉20～30mg，動(dòng)物即很快入睡。暴露股三角區(qū)，用鋒利的殺狗刀在股三角區(qū)作一個(gè)約10厘米的橫切口，把股動(dòng)、靜脈全切斷，立即噴出血液。用一塊濕紗布不斷擦去股動(dòng)脈切口周?chē)幍难汉脱龎K,同時(shí)不斷的用自來(lái)水沖洗流血,使股動(dòng)脈切口保持暢通，動(dòng)物在3～5分鐘內(nèi)即可致死。采用此種方法，動(dòng)物十分安靜，對(duì)臟器無(wú)損傷，對(duì)活殺采集病理切片標(biāo)本是一種較好的方法。